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인간 혈액 응고 결함의 효과적인 검출을 위한 금 나노입자 기능화에서 ELISA 및 서로 맞물린 전극 표면의 보완

초록

바이오센서를 사용하여 향상된 진단을 개발하는 것은 질병 합병증이 발생하기 전에 환자를 치료하는 데 중요합니다. 바이오센서를 개선하면 다양한 저농도 질병 바이오마커를 탐지할 수 있습니다. 감지 표면에 프로브/수용체를 효율적으로 고정하는 것은 감지를 향상시키는 효율적인 방법 중 하나입니다. 여기에서 우리는 인간 혈액 응고 인자 IX(FIX)에 접합된 금 나노 입자(GNP)를 포착하기 위한 아민 기능화를 가진 전 알칼리성 감지 표면을 도입하고 전략의 우수한 성능을 시연했습니다. 우리는 우리의 방법을 입증하기 위해 널리 사용되는 효소 결합 면역흡착 분석법(ELISA)과 맞물린 전극(IDE)을 선택했습니다. 실란화를 위한 최적의 양은 2.5%인 것으로 밝혀졌으며 15nm 크기의 GNP가 이상적이며 특성이 있습니다. FIX 검출 한계는 GNP와 FIX가 미리 혼합된 100pM에서 ELISA로 달성되었으며, 이는 기존 ELISA와 비교하여 biofouling 없이 감도에서 60배 개선을 나타냅니다. 또한, FIX는 120pM FIX에 해당하는 1:1280 희석에서 인간 혈청에서 더 높은 특이도로 검출되었습니다. 이러한 결과는 IDE에 대한 분석으로 보완되었으며, 여기서 25pM에서 향상된 검출이 달성되었고 FIX는 1:640의 희석에서 인간 혈청에서 검출되었습니다. 이러한 최적화된 표면은 다양한 감지 표면에서 다양한 질병의 감지를 개선하는 데 유용합니다.

소개

인간의 건강한 삶을 유지하고 수명을 연장하기 위해서는 의학의 최전선에서 모든 측면의 개선이 필수적입니다. 질병 진단은 의료 분야의 주요 분야 중 하나이며 질병의 식별과 치료를 보다 쉽게 ​​하기 위해 더욱 개선되어야 합니다. 한편, 인플루엔자, 뎅기열 등 유행성 질병은 초기에 발견하여 확산을 방지해야 한다[1,2,3]. 광범위한 바이오마커를 통해 진정한 검출이 가능한 것으로 입증된 다양한 진단이 있습니다[4, 5]. 기존에 개발된 진단 시스템 중 ELISA(Enzyme-Linked Immunosorbent assay)는 주요 바이러스 및 박테리아 질병과 분자종을 식별하는 "골드 스탠다드(gold standard)"로 널리 간주됩니다[6, 7]. 사용 용이성, 정밀도 및 낮은 검출 한계와 같은 매력적인 특성을 가진 ELISA로 다양한 전략이 개발되었습니다. 또한 다양한 질병을 동시에 발견하여 주요 질병을 선별하는 데 활용하는 것이 현실적이다[8,9,10]. ELISA는 폴리스티렌(PS) 96웰 플레이트에서 적절한 항체를 사용하여 관심 표적을 검출하는 데 사용되는 면역 분석법입니다. 표적 분자의 민감도와 선택성은 표적과 항체의 결합 친화도, 1차 항체와 2차 항체의 상호 작용, ELISA 표면에 대한 효율적인 표적 고정과 같은 ELISA의 다양한 요인에 크게 의존합니다. 특히, PS 플레이트에 표적을 고정시키는 것은 검출을 제한하는 데 중요한 역할을 합니다. 항체 또는 단백질은 항체와 소수성 그룹의 상호작용에 의해 PS 표면에 물리적으로 흡착될 수 있다[11]. 예를 들어, 항체(또는 단백질)의 약한 결합 또는 PS 플레이트 상의 항체의 불안정성 및 항체(또는 단백질)의 불균일한 분포와 관련된 몇 가지 가능성이 있어 검출 결함이 발생할 수 있습니다. 고정된 플레이트에서 항체의 적절한 방향은 무작위로 고정된 분자와 비교하여 64배 이상 검출을 향상시키는 것으로 입증되었습니다[12, 13]. 따라서 균일하게 PS 플레이트에 단백질 또는 항체를 효율적으로 고정하기 위한 적합한 절차를 찾는 것이 중요합니다. 다른 연구자들은 폴리비닐 벤질 락토노일아미드에 의한 광화학 반응 및 세제 존재하의 단백질 고정화와 같은 화학적 또는 물리적 과정에 의해 PS ELISA 플레이트에 단백질을 고정화하는 방법을 활용하고 있습니다[14,15,16]. Dixit et al. [8]은 검출한계를 개선하기 위해 amine-modified PS plate에 항체를 고정화시켰으며, 고정화 단계 이전에 (3-aminopropyl)triethoxysilane(APTES)과 항체의 premixing이 기존에 비해 54배 감도가 향상됨을 보여주었다. 기존 ELISA는 10pM의 검출 한계에 도달했습니다[8, 17].

현재 작업에서 우리는 금 나노 입자(GNPs)에 의해 지원되는 PS ELISA 플레이트에 단백질 고정화의 새로운 방법을 도입했습니다. GNP는 센서 개발 분야에서 가장 강력한 도구 중 하나입니다. 그들은 물에 쉽게 분산되고 생물학적 불활성 및 표면 기능화와의 우수한 호환성과 같은 긍정적인 특성을 제공하며 균일한 나노 크기에 맞출 수 있습니다[18,19,20,21,22,23]. GNP 결합 항체는 도파관 모드 센서에서 인플루엔자 바이러스와 FIX의 검출 한계를 개선하는 것으로 입증되었습니다[21,22,23]. GNP는 고성능 검출을 위한 도파관 모드 센서, 표면 플라즈몬 공명 및 라만 분광법을 포함한 모든 종류의 센서에 사용됩니다. 더욱이, GNP는 육안으로 분석물을 검출하기 위해 GNP 표면에 앱타머 또는 항체의 접합을 따르는 비색 분석에서도 사용되었습니다. 연구원들은 또한 검출을 향상시키기 위해 ELISA 방법에서 GNP를 사용하는 데 초점을 맞추고 있습니다[24]. 이전에 GNP-conjugated anti-mouse-IgG-HRP는 Pb(II)의 검출을 향상시켰고 검출 한계인 9 pg/mL에 도달했습니다[25]. Lakshmipriyaet al. GNP에 대한 1차 항체와 2차 항체의 접합이 결핵 유발에 관여하는 ESAT-6 단백질의 검출을 향상시킨다는 것을 발견했습니다[9, 26]. 여기에서 우리는 APTES의 도움을 받는 화학적 변형으로 PS ELISA 표면에 단백질을 고정시키기 위해 GNP를 사용했습니다. 이 접근 방식은 두 단계를 포함합니다:APTES를 사용하여 아민기로 PS 표면을 기능화한 다음 아민-변형된 PS 플레이트에 GNP-접합 단백질을 고정합니다. APTES의 아민 그룹은 PS ELISA 표면의 COOH 그룹에 결합할 수 있습니다. 한편, 음이온성 시트르산 이온으로 안정화된 GNP-접합 단백질은 정전기적 상호작용에 의해 양이온성 APTES에 결합할 수 있다[11, 27, 28]. APTES의 아미노 말단 그룹은 GNP의 시트레이트 그룹을 대체하고 PS 플레이트에 화학적으로 고정됩니다[29]. APTES의 양으로 하전된 아민 그룹은 또한 음으로 하전된 GNP를 끌어들입니다. 또한 APTES 처리는 PS 기질을 변화시켜 더 소수성으로 만듭니다[30].

화학적으로 변형된 ELISA 플레이트와 GNP 접합을 사용하여 인간 혈액 응고 캐스케이드에서 인자 IX(FIX)를 검출했습니다. FIX는 혈액 응고 시스템에서 중요한 단백질이며 혈류에서 FIX의 농도가 낮으면 응고 결핍이 발생합니다. GNP를 통해 ELISA 플레이트에서 FIX의 향상된 고정화는 더 낮은 수준의 FIX를 검출하기 위한 잠재적인 경로를 가능하게 합니다. GNP-modified ELISA 플레이트는 FIX 검출에서 과감한 개선을 보여주었습니다. 또한 우리는 인간 혈청에서 FIX의 검출을 시연했으며 현재 전략은 ELISA와 함께 사용하여 다른 바이오마커를 검출할 수 있습니다. ELISA 기판으로 위의 연구를 보완하기 위해 우리는 인간 희석 혈청 샘플에서 순수한 FIX 및 FIX를 검출하기 위해 전기화학 유전체 센서에서 널리 사용되는 또 다른 IDE(interdigitated electrode surface)에 위의 전략을 적용했습니다(그림 1a, b). .

<그림>

한나라당 지원 ELISA의 개략도. GNP는 단백질과 미리 혼합되어 APTES로 변형된 ELISA 표면에 고정되었습니다. 그런 다음 항체를 추가했습니다. 마지막으로 HRP용 기질을 사용하여 표적을 검출했습니다. 한나라당 지원 IDE의 도식적 표현

자료 및 방법

시약 및 생체분자

(3-아미노프로필)트리에톡시실란(APTES) 및 인간 혈청은 Sigma-Aldrich(미국)에서 구입했습니다. FIX 단백질 및 항-FIX 항체는 Abcam(말레이시아)에서 가져왔습니다. Anti-mouse-IgG-conjugated horseradish peroxidase(항-마우스 면역글로불린 HRP)는 Thermo-Scientific(USA)에서 구입했습니다. ELISA 플레이트는 Becton Dickinson(프랑스)에서 조달했습니다. ELISA 5x 코팅 완충액은 BioLegend(UK)에서 구입했습니다. 소 혈청 알부민(BSA) 및 HRP 기질은 Promega(USA)에서 입수했습니다. 금 나노 입자(GNP)(10, 15 및 80 nm)는 Nanocs(USA)에서 입수했습니다. 분석적 ELISA 리더는 Fisher Scientific(말레이시아)의 제품입니다.

실란 시약 및 GNP를 사용한 최적화

APTES와 GNP의 적절한 농도를 최적화하기 위해 ELISA 플레이트에서 APTES와 GNP의 다른 조합으로 고정화 프로세스를 수행했습니다. 처음에 ELISA 플레이트를 1 시간 동안 1% KOH로 하이드록실화했습니다. 그런 다음, 1.25, 2.5 및 5% APTES를 ELISA 플레이트의 별도 웰에 실온(RT)에서 5시간 동안 연결했습니다. 그 후, 25, 50 및 100% 농도의 희석된 GNP(증류수)를 APTES로 수정된 표면에 고정화했습니다. 그런 다음 200 nM에서 FIX를 GNP 표면에 결합했습니다. 그런 다음 나머지 결합 부위를 2% BSA를 사용하여 차단한 다음 FIX 항체의 1:1000 희석액을 도입한 다음 항-마우스-IgG-HRP의 1:1000 희석액을 첨가했습니다. 마지막으로 FIX 상호작용을 감지하기 위해 기질을 추가했습니다. 웰은 세척 완충액(0.05% Tween 20을 함유하는 PBS 완충액, pH 약 7.4)을 사용하여 각 단계 사이에 5회 세척되었습니다. 마지막으로 405 nm에서 ELISA 판독기로 광학 밀도(OD)를 측정했습니다. 15 nm 크기의 GNP가 이 실험에 사용되었습니다.

필요한 GNP 규모 결정

최적의 조건에서 APTES 및 GNP 희석의 적절한 농도를 결정한 후 10, 15 및 80 nm GNP를 FIX 고정을 위해 시도하여 가장 적합한 크기를 결정했습니다. 위에서 언급한 것과 동일한 실험 조건이 사용되었습니다. 2.5%의 APTES와 50%의 GNP 희석을 FIX 고정에 사용했습니다.

FIX의 특정 및 선택적 감지

우리는 또한 ELISA 플레이트에서 단백질과 항체의 특이적 결합을 확인했습니다. 이를 위해 세 가지 종류의 대조 실험을 활용했습니다. 우리는 대조군 및 특정 조건으로 작용하도록 ELISA 플레이트에 다음 순서의 생체 분자를 고정화했습니다. 대조군 1(C1), FIX-BSA-항-마우스 IgG-기질; 대조군 2(C2), FIX-BSA-FIX 항체-기질; 대조군 3(C3), BSA-FIX 항체-항 마우스 IgG-기질, 특이적(S), FIX-BSA-FIX 항체-항-마우스 IgG-기질.

ELISA 플레이트 대 기존 ELISA에서 GNP-Conjugated FIX 검출

FIX는 APTES-GNP-FIX 및 APTES-GNP premixed FIX와 같은 두 가지 다른 방법으로 GNP-modified ELISA 플레이트를 사용하여 검출되었으며 이러한 방법을 기존 ELISA와 비교했습니다. 다음 단계는 절차를 구성합니다. 통상적인 ELISA:(i) FIX 단백질을 0 내지 200 nM 농도의 1X 코팅 완충액에 희석하고, (ii) 2% BSA로 차단하고, (iii) FIX 항체의 1:1000 희석액을 첨가하고, (iv) 1:항-마우스-IgG-HRP의 1000 희석액을 첨가하고, (v) HRP용 기질을 첨가하고 405 nm에서 측정하였다.

APTES-GNP-FIX(방법 1):(i) PS 플레이트는 1% KOH에 의해 활성화되었고, (ii) 2.5% APTES는 실온에서 5시간 동안 ELISA 플레이트에 추가되었습니다. (iii) 받은 15nm의 25% GNP를 첨가하고 밤새 4 °C에서 유지했습니다. (iv) 0에서 200 nM 농도의 FIX를 GNP 표면에 독립적으로 결합하도록 허용했습니다. (v) 나머지 표면은 2% BSA에 의해 차단되었습니다. (vi) 1:1000 희석액의 FIX 항체를 첨가하고, (vii) 항-마우스-IgG-HRP의 1:1000 희석액을 첨가하고, (vii) HRP에 대한 기질을 첨가하고 405 nm에서 측정하였다.

APTES-GNP 사전 혼합 FIX(방법 2):(i) PS 플레이트를 1% KOH로 활성화, (ii) 2.5% APTES를 실온에서 5시간 동안 첨가, (iii) 농도가 다른 25% 15nm GNP 용액의 사전 혼합 FIX(RT에서 30분 동안 인큐베이션, 0 내지 200nM)를 APTES-변형된 표면에 고정시키고, (iv) 나머지 표면을 2% BSA에 의해 차단하고, (v) FIX 항체의 1:1000 희석액을 첨가하고, (vi) 항-마우스-IgG-HRP의 1:1000 희석액을 첨가하고, (vii) HRP용 기질을 첨가하고 405 nm에서 측정하였다.

인간 혈청 및 스파이킹 후 FIX에서 FIX의 검출

인간 혈청에서 FIX를 검출하기 위해 혈청을 FIX 대신 GNP와 미리 혼합했습니다. 20에서 1280까지의 혈청 희석액을 적정하고 GNP와 혼합하여 FIX의 검출을 평가했습니다. 다른 실험 조건 및 농도는 이전 실험과 유사하게 사용되었습니다.

다양한 농도의 FIX(0 ~ 8 nM)를 인간 혈청의 최적화된 희석액에 첨가하고 ELISA 플레이트에 고정화하기 전에 GNP와 사전 혼합하여 스파이킹 실험을 수행했습니다. 다른 실험 조건 및 농도는 이전 실험에서와 같이 사용되었습니다.

맞물린 전극 표면 제작

IDE(Interdigitated Electrode) 표면 제조 공정에는 웨이퍼 세정, 산화층 성장, 네거티브 포토레지스트 스핀 코팅, 포토레지스트 패터닝, 알루미늄 금속 증착, 포토레지스트 제거 및 웨이퍼 다이싱이 포함됩니다. 공정은 Buffered oxide etchant로 세척된 웨이퍼에서 시작한 후 고온(1000 °C)에서 실리콘 웨이퍼(310 nm)에서 산화된 다음 알루미늄을 사용하여 에칭 공정을 수행했습니다. 네거티브 포토레지스트는 2000 rpm의 스핀 속도로 스핀 코터에 의해 증착되었습니다. 레지스트는 UV 광(240 s)에 노출된 후 RD-6에 의해 현상되었습니다. 그런 다음, 240 nm 알루미늄이 3.0E-5 Torr에서 열 증발기(Edwards Auto 306)에 의해 증착되었습니다. 고체 IDE가 나타날 때까지 아세톤을 사용하여 포토레지스트를 제거한 다음 다이싱하여 단일 IDE를 생성했습니다. 마지막으로, 궁극적인 생체분자 고정을 위해 산화아연 층이 상단에 덧씌워졌습니다[31]. 산화아연 부착을 진행하기 전에 먼저 감지 표면을 1 M 수산화칼륨(pH 9.0)으로 세척했습니다.

GNP 수정 표면에서 FIX 감지

GNP-modified ELISA 기질로 FIX의 검출 효율을 최적화하고 확인한 후, 위의 검출을 보완하기 위해 IDE 표면에 동일한 표면 개질을 수행했습니다. 초기에 IDE 산화아연 표면은 실온에서 3시간 동안 에탄올에 희석된 2.5% APTES를 첨가하여 아민으로 개질되었습니다. 그 후, 표면을 에탄올로 5회 세척하고, GNP(25%) 및 FIX의 프리믹스를 첨가하였다. 그 다음, 나머지 표면을 에탄올아민으로 차단하고, FIX 항체를 다음으로 첨가하여 FIX를 검출하였다. 현재 신호에 수반되는 변화가 감지되었습니다. 검출 한계를 확인하기 위해 다른 농도의 FIX를 GNP와 독립적으로 혼합하고 아민으로 변형된 IDE 표면에 고정한 다음 항체로 검출했습니다. 검출 한계는 3σ 계산에 의해 결정되었습니다. GNP와 혼합된 희석된 인간 혈청에서 풍부한 FIX는 아민-변형된 IDE 표면에 고정된 다음 항체에 의해 검출되었습니다. 위 표면의 제작은 [31] 앞에서 설명한 대로 따랐습니다.

결과 및 토론

PS ELISA 표면에서의 전처리

폴리스티렌(PS) ELISA 표면에 단백질 또는 항체를 효과적으로 고정하면 표적-프로브 상호작용의 검출 한계가 분명히 향상됩니다. ELISA 플레이트에 단백질 또는 항체 부착을 위해 다양한 고정화 방법이 사용되었습니다. 이 작업에서 우리는 단백질 또는 항체 고정을 위해 GNP를 사용하여 화학적으로 변형된 ELISA 표면을 도입했습니다. 우리는 중요하다고 널리 보고된 factor IX(FIX)와 같은 중요한 응고 인자 중 하나를 사용하기를 원했습니다[32,33,34,35,36]. 그림 1은 폴리스티렌 ELISA 표면에 단백질 고정화의 개략도를 보여줍니다. 먼저, ELISA 표면은 1% KOH에 의해 활성화되었습니다. KOH 전처리가 없을 경우 PS 표면에 결합되는 APTES 분자의 수는 최소화됩니다. 이것은 고분자에 APTES의 초기 흡착을 촉진하는 극성 및 수소 결합 수용기가 없기 때문입니다[11]. KOH 처리 후 GNP를 포착하기 위해 APTES의 적절한 농도에 의해 표면이 아민으로 개질되었습니다.

한나라당 특징

더 진행하기 전에 광학, 형태 및 크기 분포 측정을 통해 수신된 GNP(15 nm)를 특성화했습니다. 그림 2a는 GNP의 UV-Vis 분광광도법 분석을 표시하며, 이는 분명히 550 nm에서 피크 최대값을 나타냅니다. 투과 전자 현미경 관찰은 GNP의 크기가 ~ 15 nm이고 모양이 양호함을 보여줍니다(그림 2b 및 삽입). 푸리에 변환 적외선 분광 분석은 파수 500에서 4000 cm -1 까지 수행되었습니다. (그림 2c). 1650 cm −1 에서 명백한 단일 피크 APTES의 부착을 나타내는 아민 그룹에 대한 피크의 존재와 함께 또 다른 작은 피크와 함께 금에 대해 주목되었습니다. 체적 분포 및 제타 전위 분석에 의해 추가 지원이 제공되었습니다. 이 분석을 바탕으로 부피 분포는 크기 분포에 약간의 변화가 있음을 나타내며(그림 2d) 제타 전위는 - 6.9로 본 연구에 사용된 GNP의 안정성을 나타냅니다(그림 2e).

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금 나노 입자의 특성. 최적의 크기 15 nm로 수행. UV-Vis 분광광도법 분석. 550 nm에서 두드러진 단일 피크가 발견되었습니다. 투과전자현미경 관찰. 그림 삽입은 확대된 이미지를 보여줍니다. 스케일 바가 표시됩니다. 푸리에 변환 적외선 분광 분석. 금과 NH2에 대한 겉보기 피크 위치 표시됩니다. d GNP의 부피 분포 분석. 얻어진 분포가 표시됩니다. 제타 전위 분석. 값은 − 6.9

인 것으로 확인되었습니다.

GNP를 포착하기 위한 아민 표면의 준비 및 최적화

APTES의 양은 PS 표면에 GNP 또는 항체의 고정화에 큰 영향을 미칩니다. 일반적으로 고도로 밀집된 APTES 분자는 위양성 결과를 생성할 가능성이 있습니다. APTES는 여러 센서 표면에 항체를 고정시키기 위해 1~2%로 사용되었기 때문에 여기에서는 무수 에탄올에서 준비된 1.25~5% APTES를 적정했습니다. 다음으로 우리의 목표는 APTES 수정 표면에 GNP를 고정시키는 것이었습니다. 더 많은 수의 GNP가 군집 효과를 생성할 가능성이 있으므로 적절한 희석을 최적화하기 위해 APTES 수정 표면에서 15nm의 25, 50 또는 100%를 갖는 GNP를 테스트했습니다. 이러한 변형된 표면에서 250 nM의 FIX가 FIX 항체로 검출되었습니다. 그림 2a 및 b에서 볼 수 있듯이 1.25% APTES는 모든 GNP 희석(25, 50 및 100%)에서 더 적은 광학 흡광도(OD)를 나타내는 반면, 2.5 및 5% APTES는 50 및 100% 모두에서 더 높은 흡광도를 나타냅니다. 한나라당. 동시에 APTES 및 GNP 농도가 증가함에 따라 신호 대 잡음비가 개선되었습니다(그림 3a, b). 50% APTES와 100% GNP는 비특이적 결합을 보였고, 50%와 100% GNP와 2.5% APTES는 유사한 흡광도를 보였다. 이렇게 얻은 값을 기반으로 추가 실험을 위해 2.5% APTES 및 25% GNP 희석을 선택했습니다.

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APTES 및 GNP의 양 결정. 세 가지 다른 농도(1.25, 2.5, 5%)의 APTES와 세 가지 GNP(25, 50, 100%) 희석액을 사용했습니다. 기질을 추가한 후 FIX의 시각적 감지. FIX가 없는 제어 레인이 포함되었습니다. 최적의 APTES 레벨의 그래픽 표현. 2.5% APTES 및 25% GNP가 최적인 것으로 밝혀졌습니다.

잠재적 GNP 규모 결정

APTES 및 GNP 희석 최적화 후, 우리는 다음으로 적절한 GNP 크기를 평가했습니다. 표면적이 단백질 고정화에 중요한 역할을 하기 때문에 여기에서는 10, 15 및 80 nm를 포함하여 세 가지 크기의 GNP를 고정화하려고 했습니다. 크기가 다른 GNP는 단백질을 끌어당기는 표면적과 전하가 다르며 APTES로 변형된 표면의 결합 능력도 다릅니다. 도 4a에 도시된 바와 같이, 250 nM FIX가 10, 15 및 80 nm GNP로 변형된 ELISA 표면으로 검출되었다. 15 및 80 nm GNP는 250 nM의 FIX 검출에 대해 0.4(OD)와 거의 동일한 흡광도를 나타내지만 10nm 크기의 GNP는 0.34 OD에 불과한 것으로 나타났습니다. 이 실험에서 우리는 15 또는 80 nm GNP가 추가 실험에 적합함을 확인했으며 15 nm GNP로 계속 진행했습니다.

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GNP의 이상적인 크기를 결정합니다. 10, 15, 80 nm 중에서 15와 80 nm는 비슷한 결과를 보였다. FIX로 검출 한계를 결정하기 위해 15나노미터가 사용되었습니다. FIX 검출을 위한 대조 실험. 세 가지 다른 대조군 실험(C1 - FIX 항체 없음, C2 - 항-마우스 IgG 없음, C3 - FIX 없음)을 수행했습니다. 어떤 대조군 실험에서도 유의미한 신호가 발견되지 않았습니다. 그림 삽입은 시각적 결과를 표시합니다.

무오염 및 고성능 확인을 위한 실험 전략

GNP로 수정된 ELISA 표면에서 FIX를 감지하기 전에 "재료 및 방법" 섹션에 설명된 대로 세 가지 종류의 제어 실험을 수행했습니다. 도 4b에 도시된 바와 같이, 대조군 실험 1, 2 및 3(C1, C2 및 C3)에 대한 웰에서 유의한 흡광도를 관찰할 수 없었다. 특정 실험(S)에서 더 높은 수준의 흡광도는 명백한 색상 변화와 명확하게 연관됩니다. C1의 경우 FIX 항체를 추가하지 않았으며 이는 FIX 항체가 FIX와 특이적으로 상호작용함을 확인합니다(in S). C2에서 항-마우스 IgG가 없는 경우 관찰 가능한 신호가 발견되지 않았으며, 이는 FIX와 항체에 이어 항-마우스 IgG의 적절한 상호작용을 위한 추가 고정을 제공합니다. C3에서는 FIX가 없으면 유의한 흡광도를 측정할 수 없습니다. 이러한 결과로부터 ELISA 표면에서 FIX와 그 항체의 적절한 상호작용은 비특이적 결합 없이 확인되었다.

GNP 지원 ELISA 대 기존 ELISA:민감도 측정

대조 실험을 수행한 후 GNP로 수정된 표면으로 FIX를 검출하고 그 결과를 기존의 ELISA 방법과 비교했습니다. 우리는 FIX의 검출을 위해 세 가지 다른 실험을 수행했습니다. 먼저 APTES로 변형된 표면에 GNP를 고정화한 다음 정전기적 상호작용을 통해 FIX를 GNP 표면에 부착시켰다. 정전기적 상호작용으로 인해 대부분의 단백질은 GNP 표면에 결합할 가능성이 있습니다. 그런 식으로 ELISA PS 표면에 FIX를 고정할 수 있습니다. 단백질 고정화는 또한 아미노산과 GNP에서 발생하는 전하에 따라 달라집니다. Gopinathet al. [37]은 GNP 표면에 FIX의 강한 결합을 증명했으며, 높은 염분 조건에서도 안정하다는 것을 발견했습니다. 두 번째 방법에서 GNP와 단백질은 아민화된 ELISA PS 표면에 고정되기 전에 먼저 사전 혼합되었습니다. 단백질 분자가 용액 상태에서 GNP 표면에 결합할 가능성이 더 높기 때문에 이러한 방식으로 더 많은 단백질이 결합할 수 있을 것으로 예상했다. 그런 다음 미리 혼합된 용액을 APTES-개질된 아민 표면에 고정화했습니다. 이들 방법을 기존의 ELISA 방법과 비교하였다. Fig. 5a에서 보는 바와 같이 FIX 농도를 0에서 200 nM으로 적정하였을 때 기존의 ELISA(방법 1)에서는 6 nM의 검출한계를 보였다. APTES-GNP-FIX 방식(방식 2)은 검출한계가 200pM으로 기존 ELISA에 비해 30배 이상 높은 감도를 보인다. 감도 향상은 ELISA PS 플레이트에 고정된 많은 수의 항원의 적절한 방향을 통해 달성되며 궁극적으로 더 많은 항체가 상호 작용할 것입니다. 이 연구에서 금 나노입자는 ELISA 플레이트의 아민 변형을 통해 더 많은 항원을 고정시키는 데 사용되었습니다. 기존의 ELISA에서 항원은 ELISA 플레이트에 직접 고정되어 표면에 결합하는 분자의 수가 적고 현재의 금 나노입자 매개 전략에 비해 감도가 감소합니다. 또한, 국부적 표면 플라즈몬 공명은 GNP에 대한 연구에서 밝혀진 바와 같이 감도를 더욱 향상시킵니다. GNP와 FIX를 premix하면 예상대로 검출 한계가 크게 개선되어 기존 ELISA보다 60배 높은 감도인 100pM 수준에 도달했습니다. 그림 5a에서 볼 수 있듯이 단백질 고정을 위해 GNP를 사용할 때 GNP 표면에 미리 혼합된 단백질과 직접 고정된 단백질 모두에서 최대 흡광도가 ~ 0.6에 도달했지만 기존의 ELISA로 발견된 흡광도는 ~ 0.4입니다. FIX의 유사한 농도(200 nM). 다른 농도의 경우에도 방법 3은 기존 ELISA에 비해 흡광도 차이가 높았고, 이 역시 방법 2에 비해 상당히 높았다. 기존 ELISA의 경우 25 nM, 3 nM에서 가시광선 검출이 나타났다. 방법 2에서. 방법 3을 사용하면 더 높은 흡광도로 인해 FIX의 200pM에서 색상 변화를 눈으로 볼 수 있었습니다(그림 5a). 방법 3에서 흡광도는 25 nM에서 포화되었습니다. FIX의 200pM에서 색상 변화를 시각화할 수 있었기 때문에 검출 한계를 평가하고 더 낮은 농도의 FIX를 사용하여 적정했습니다. GNP와 FIX를 미리 혼합했을 때 검출 한계가 100pM에 도달했음이 분명했습니다(그림 5b).

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GNP-modified ELISA에서 FIX의 감도와 기존 ELISA 비교. FIX를 0.2에서 200 nM으로 적정하였다. 기존 ELISA는 6 nM의 검출 한계를 나타냅니다. GNP-modified ELISA에서 신호는 200pM까지 관찰되었다. 그림 삽입은 시각적 결과를 표시합니다. GNP 변형 ELISA 플레이트에서 FIX의 검출 한계. FIX를 25 pM에서 100 pM으로 적정하였다. 검출한계는 오후 100시로 밝혀졌다. 그림 삽입은 시각적 결과를 표시합니다.

인간 혈청 내 FIX 검출 및 스파이킹 FIX에 의한 향상

FIX가 응고 캐스케이드에서 중요한 역할을 하는 것으로 밝혀졌기 때문에[38, 39], 검출 한계를 확인한 후 인간 혈청에서도 FIX를 검출했습니다. 이 분석을 위해 우리는 1:1280에서 1:20 희석 사이의 범위에서 인간 혈청을 적정했습니다. 희석된 혈청을 GNP와 미리 혼합하고 위에서 언급한 바와 같이 APTES-변형 ELISA 표면에 고정화했습니다. FIX가 125 pM FIX에 해당하는 1:640의 혈청 희석액에서 검출되었음을 알 수 있습니다(그림 6a). 건강한 인간 혈청에는 일반적으로 알부민 및 글로불린과 같은 다른 주요 단백질과 함께 약 87 nM FIX가 포함되어 있습니다. 우리의 전략으로 우리는 인간 혈청에서 125pM의 특정 검출 한계에 도달했으며 이는 혈액 응고 결함을 식별하는 데 유용합니다. 반면에, 인간 혈청의 1:640 희석액에 FIX를 1에서 8 nM으로 스파이크했을 때 FIX 농도와 함께 증가하는 흡광도 증가를 나타냈습니다(그림 6b).

<사진>

인간 혈청에서 FIX의 검출. 인간 혈청을 1:20에서 1:1280으로 희석했습니다. FIX는 1:640으로 희석된 인간 혈청에서 검출되었습니다(내부 그림은 개략도를 나타냄). 인간 혈청의 1:640 희석액에 FIX(0.125~8 nM)를 스파이킹합니다. FIX 농도가 증가함에 따라 흡광도가 증가했습니다. 그림 삽입은 시각적 결과를 표시합니다.

IDE 표면에서 GNP-FIX 감지:보완 분석

GNP-conjugated FIX가 검출 한계를 개선한 것으로 밝혀졌기 때문에 우리는 이러한 발견을 보완하기 위해 IDE 표면이 있는 전기화학 센서를 사용하여 유사한 전략을 적용했습니다. 우리는 FIX를 25에서 200pM(GNP와 혼합)으로 적정하고 아민 수정된 IDE 표면에 고정한 다음 FIX 항체로 검출했습니다. 도 7a에 도시된 바와 같이, FIX 농도가 증가함에 따라 전류 레벨도 기준선에서 동시에 증가하였다. FIX 수준은 200pM부터 포화되었고, 검출한계는 25pM인 것으로 밝혀졌다. 이 검출은 ELISA(100pM)에 비해 4배 향상되었습니다. 또한, 희석된 인간 혈청에서 FIX 검출이 입증되었다(도 7b). 이 실험을 위해 인간 혈청을 1:80에서 1:1280으로 희석했습니다. 그림에서 볼 수 있듯이 1:1280의 희석(빨간색 곡선)은 3σ 추정으로 기준선(검은색 곡선)과 명백한 차이를 보여 1:1280의 희석으로 인간 혈청에서 FIX의 명백한 검출이 일치함을 나타냅니다. ELISA 결과(1:640에서 감지). 희석도가 낮은 IDE에서 감지하면 감도가 증가합니다.

<그림>

Limit of detection of FIX-conjugated GNP on IDE sensing surface. FIX was titrated from 25 to 400 pM. The limit of detection was found to be 25 pM. Detection of FIX in human serum on the IDE sensing surface. Human serum was diluted from 1:80 to 1:1280. FIX was detected in human serum diluted 1:1280

결론

Efficient immobilization of protein or antibody on the PS ELISA surface is a crucial step to improve the limit of detection. Here, we introduced a new and easy protein immobilization strategy on the PS ELISA surface assisted by GNPs. Two different methods were used:one is the direct immobilization of FIX on the GNP-modified surface, and another one is premixing of FIX with GNPs before attachment. It was found with the former method that improvement of the limit detection is 30-fold higher compared with the conventional ELISA. The latter method showed a 60-fold improved limit of detection compared to the conventional ELISA. We also demonstrated the detection of FIX in 1:650 diluted human serum, which is equivalent to 125 pM. Obviously, these strategies proved that the higher binding of proteins on the ELISA surface was able to improve the sensitivity and to be useful for detecting a wide range of biomarkers on the ELISA surface.

데이터 및 자료의 가용성

All of the data are fully available without restriction.

약어

APTES:

(3-Aminopropyl)triethoxysilane

BSA:

소 혈청 알부민

COOH:

Carboxyl

ELISA:

Enzyme-linked immunosorbent assay

Fc:

Fragment crystallizable

GNP:

Gold nanoparticle

HRP:

Horseradish peroxidase

IDE:

Interdigitated electrode

IgG:

Immunoglobulin

OD:

Optical density

PEG:

폴리에틸렌 글리콜

추신:

폴리스티렌

PVLA:

Polyvinyl benzyl lactonoylamide

TMB:

3,3′,5,5′-Tetramethylbenzidine


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