조직 공학의 발달로 정형 외과 치료 분야에서 생체 재료 응용이 증가하고 있습니다 [41]. 생체 재료에는 우수한 생체 안전성이 필요합니다. G와 GO는 그 안전성과 독특한 물리화학적 특성으로 인해 의료분야에서 널리 사용되어 왔다. 항균력 면에서는 G와 GO가 항균력이 좋은 물질이다. 주요 항균 메커니즘은 전하 이동[28, 29]과 세포로의 침투[30]입니다. 따라서 G와 GO의 항균력은 안전한 범위 미만의 뼈 복구 재료에 대한 요구 사항을 충족할 수 있습니다.
본 연구에서는 생물학적 안전성 특성을 확인하기 위해 SEM 및 TEM을 통해 BMSC에 대한 G 및 GO 세포 독성 효과를 관찰했으며 이 효과는 용량 의존적 방식으로 제시되었습니다. 더욱이, GO는 더 높은 세포독성 효과를 가졌다. 항균 특성의 측면에서 우리는 G와 GO가 용량 의존 방식으로 항균 특성을 가지며 GO 효과가 생체 내에서 G보다 훨씬 더 우수함을 추가로 관찰했습니다. 결론적으로, 50~100 μg/ml 범위의 농도는 작은 세포독성 효과와 주요 항균력의 균형을 유지하는 것이 더 나을 수 있습니다.
이 연구는 G와 GO가 모두 BMSC와 골격 세포에 대한 세포 독성 효과를 나타내며 GO 독성이 G보다 높다는 것을 보여주었습니다. 많은 연구에서 G 나노 세포 독성과 물질의 물리적 및 화학적 특성(예:크기, 모양 및 표면 작용기) [35, 42, 43]. 게다가, 연구자들은 순수한 G가 미토콘드리아 막 전위(MMP)의 고갈과 세포내 활성산소종(ROS)의 증가를 통해 세포독성을 유도할 수 있다는 것을 발견했습니다[12], 따라서 미토콘드리아 경로의 활성화에 의해 세포자멸사를 유발합니다[34, 44] . 그러나 GO의 세포독성이 G보다 높은 현상은 GO의 표면에 포함된 그룹과 관련이 있을 수 있다[45]. 연구원들은 GO의 세포독성이 혈청 함량과 직접적인 관련이 있음을 발견했습니다. Hu Wet al. 는 GO가 혈청 단백질을 흡착하여 단백질 봉입체를 형성할 수 있는 강력한 흡착 능력을 가지고 있음을 입증했으며 [46], 이는 G에 비해 GO의 더 높은 세포독성 염기성을 보여줍니다. 우리의 실험은 위에서 언급한 결론을 확인했습니다. 또한, 동물 독성은 G 및 GO의 생물학적 안전성 평가의 또 다른 중요한 지표입니다. 본 연구에서는 GO 그룹에서 근육 조직에서 심각한 병리학적 반응이 발견되어 G 그룹에 비해 독성이 더 높음을 나타냅니다.
둘째, 항균 특성은 G 및 GO 용량 변화와 일치합니다. 50~100 μg/ml GO 농도는 생물학적 독성과 항균 능력의 균형을 더 잘 맞출 수 있습니다. 우리의 연구는 생물학적 독성과 항균 능력이 모두 용량 의존적 방식으로 존재함을 보여주었습니다. 따라서 일부 농도 범위는 사소한 생물학적 독성과 주요 항균 능력의 균형을 유지할 수 있습니다.
결과는 G와 GO가 모두 BMSC와 근육 조직에 대해 약간의 생물학적 독성을 가지고 있음을 보여주었지만, GO 그룹에서 항균 능력은 생체 내에서 유의미했습니다. 이전의 G 및 GO 독성 결과를 기반으로 우리는 50~100μg/ml의 농도가 경미한 생물학적 독성과 주요 항균력의 균형을 유지하는 것이 더 나을 수 있음을 발견하여 생물 안전성 및 항균성에 대한 새로운 증거를 제공합니다. 임상 작업에서 생체 내 및 시험관 내 G 및 GO의 능력.
GO는 많은 독성 효과가 있지만 GO를 변형하면 독성을 피할 수 있습니다[47, 48]. 동시에 변형된 GO 물질은 체내에서 분해 및 제거될 수 있습니다[49]. 따라서 GO에 대한 수정의 새로운 연구 방향이 촉구된다. 더욱이, G와 GO가 다른 중요한 기관이나 조직에 미치는 영향은 전체론 의학에 도달하기 위해 여전히 더 많은 연구가 필요합니다. 한편, GO가 박테리아에 산화 스트레스 손상을 유발하는지와 추가적인 항균 메커니즘의 존재 여부는 추가 연구가 필요합니다. 조직 공학에 적용하기 전에 G 및 GO 독성의 메커니즘과 독성을 줄이기 위한 수정된 방법은 여전히 더 많은 설명이 필요합니다.
섹션> 방법
동물
수컷 Sprague-Dawley(SD) 쥐와 수컷 Balb/C 마우스는 이란 파스퇴르 연구소에서 구입하여 25°C에서 12시간 명암 조건으로 유지했습니다. 4주령의 SD 쥐를 BMSC의 분리에 사용했습니다. Balb/C 마우스는 생체 내 동물 실험에 사용되었습니다. 모든 동물은 제4군사대학 실험동물센터에서 사육되었으며, 수술은 시징 병원의 동물 실험 수술 기준에 따라 진행되었습니다. 모든 동물 실험은 4군 의과대학 기관 동물 관리 및 사용 위원회의 승인을 받았습니다.
그래핀 및 산화 그래핀
G 또는 GO(레이어 1-2)(Hengqiu Graphene Technology, 중국)를 각각 절대 에탄올(투과 전자 현미경 테스트, TEM에 사용), PBS 버퍼(시험관 내 세포 실험에 사용) 및 식염수에 추가했습니다. 생체 내 동물 실험) G 또는 GO 용액을 준비합니다(라만 분광법 테스트 결과는 Hengqiu Graphene Technology에서 제공했습니다). G 또는 GO 용액의 초기 농도는 1 mg/ml였습니다. 실험 2시간 전에 초음파를 이용하여 G 또는 GO 용액을 분산시켰다.
세포독성
세포 배양
세포 배양 배지는 10% 소태아혈청(Gibco, Carlsbad, California, USA), DMEM/F12(Corning, NY, USA), 100U/ml 페니실린 및 100U/ml 스트렙토마이신(Sigma, St. Louis, 미국 미주리주). BMSC는 4주령 수컷 쥐로부터 골수 배양 방법으로 추출하였다[50]. 쥐를 처형한 후, 대퇴골과 경골을 무균 상태에서 제거하였다. 골수강을 세포 배양 배지로 세척했습니다. 그 후, 혼합물을 10분 동안 1500rpm에서 원심분리하여 골수를 수집하였다. 골수를 세포 배양 배지로 재현탁시키고 37°C 및 5% 이산화탄소 세포 배양기에서 젤라틴 코팅된 세포 배양 병에 접종하였다. 48시간 후에 세포 배양 병의 배지를 교체하고 부착되지 않은 세포를 제거했습니다. 그런 다음, 배양 배지는 48시간마다 한 번씩 교체되었습니다. 세 번째에서 다섯 번째 계대 세포는 다음 실험에 사용되었습니다.
분화 배지(Cyagen, CA, USA)를 사용하여 BMSC에 대한 골형성 분화 및 지방형성 분화를 수행하였다. 2주 분화 유도 후, 세포를 30분 동안 4% 포름알데히드 용액으로 고정시켰다; 그 후 골형성 분화를 위한 alizarin red 염색과 지방분화를 위한 oil red 염색을 시행하였다.
셀 활동
BMSC 현탁액 농도를 5 × 10
4
로 조정했습니다. /l 및 세포는 각 구멍에 100μl가 있는 96-구멍 플레이트에서 배양되었습니다. 24시간 후, 배지를 0(대조군), 10, 50, 100, 500, 1000㎍/ml 농도의 G 또는 GO를 함유하는 세포 배양 배지로 교체하였다. 24시간 배양 후, 10㎕의 alamarBlue(Bio-rad, Hercules, CA, USA)를 추가 4시간 배양을 위해 각 구멍에 첨가하였다. Microplate(Bio-rad, Hercules, CA, USA)를 사용하여 570 및 600 nm에서 OD(광학 밀도) 값을 감지한 다음 alamarBlue® 비색 계산기(Bio-rad, Hercules, California, USA)를 사용하여 세포 증식 속도를 평가합니다.
SEM을 사용한 특성화
BMSC는 두께가 0.17mm이고 직경이 14mm인 24홀 얇은 유리판에 시딩되었습니다. 24시간 배양 후 배지를 0(대조군), 10, 50, 100, 500, 1000㎍/ml 농도의 G 또는 GO를 포함하는 세포 배양 배지로 교체하였다. 세포를 24시간 동안 계속 배양한 후 상층액을 제거하였다. 세포를 2.5% 글루타르알데히드 용액으로 24시간 동안 고정시켰다. 그런 다음 탈수 및 도금 후 주사형 전자현미경(Hitachi S-4800 SEM, JPN)으로 세포를 관찰하였다.
TEM을 사용한 특성화
G 및 GO 현탁액을 50㎍/ml로 조정하였다. 세포를 24시간 동안 G 또는 GO와 공동 배양한 다음 0.25% 트립신으로 소화시켰다. 10분 동안 1000rpm으로 원심분리한 후 상층액을 제거하였다. 세포를 2.5% 글루타르알데히드 용액으로 24시간 동안 고정하고 투과전자현미경(FEI Tecnai G2 TEM, USA)으로 슬라이스를 관찰했습니다.
근육 조직의 독성 및 식별
생체 내에서 G 및 GO 세포독성을 분석하기 위해 정형외과에서 국소 이식 상황을 나타내고 시뮬레이션할 골격 조직을 선택합니다. G 또는 GO를 Balb/C 마우스의 대퇴골 내측 근육 조직에 각각 주사하였다. 7일 후에 마우스를 죽이고, G 또는 GO를 주입한 근육 조직을 10% 중성 포름알데히드 용액으로 24시간 동안 고정하였다. 알코올 탈수 후 조직을 파라핀으로 감싼 후 슬라이스하여 헤마톡실린 및 에오신(HE) 염색을 수행하였다. 도립현미경(Leica DMI6000B 도립현미경, RBT)으로 조각을 관찰했습니다.
항균 능력
박테리아 배양
우리는 발광 반응을 위해 배양하기 위해 Xen-29를 선택했습니다. Xen-29는 Staphylococcus aureus의 생물발광 박테리아였습니다. (Caliper, LS, USA) ATCC-12600 유래. 박테리아는 37°C에서 200㎍/ml 카나마이신(Sigma, St. Louis, MO, USA)을 함유하는 Luria Bertani 배지(LB, Sigma, St. Louis, MO, USA)에서 배양되었습니다. 단일 콜로니를 37°C의 LB 배지에서 200rpm의 속도로 2-3시간 동안 흔들면서 채취했습니다. 600 nm에서의 흡광도가 LB 브로스 블랭크에서의 흡광도와 비교하여 0.5(대략 1.44 × 108 cfu/ml에 해당)에 도달하면 박테리아를 다음 실험에 사용했습니다.
생체발광 이미징
생물 발광 이미징을 제시하기 위해 IVIS Lumina II 냉각 CCD 광학 거시적 이미징 시스템(Caliper, LS, USA)을 사용했습니다. 박테리아 생물발광 신호는 광자 강도(PI)로 변환되었습니다. Living Image® 4.2 소프트웨어(Caliper, LS, USA)는 관심 영역(ROI)에서 PI의 정량화에 사용되었습니다. 이미징 과정에서 마우스의 움직임을 방지하기 위해 수신된 신호의 불안정성을 피하기 위해 마우스를 마취했습니다.
체외 항균 능력
Xen-29가 24홀 플레이트에 추가되었고 각 홀의 농도는 10
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이었습니다. 씨퓨. 그 다음, G 또는 GO 현탁액을 첨가하여 농도를 0(대조군), 10, 50, 100, 500 및 1000㎍/ml로 조정하였다. 각 구멍의 일정한 부피는 500μl였습니다. G와 GO의 항균력을 분석하기 위해 개입 후 0, 8, 24시간에 ROI 내의 세균성 PI를 순차적으로 측정하였다.
생체내 항균력
위의 실험 결과를 바탕으로 항균력을 확인하기 위해 100μg/ml 군을 선택하였다. Xen-29 현탁액(200㎕)을 Balb/C 마우스의 대퇴골 내측 근육 조직에 주사하였다. ROI의 PI는 수술 후 0시간과 24시간에 검출되었습니다.
데이터 분석
모든 데이터는 평균 ± 표준 편차(SD)로 표시되었습니다. 학생의 t 동일한 농도의 G와 GO를 비교하기 위해 테스트를 사용했습니다. 일원 분산 분석(ANOVA)을 사용하여 농도가 다른 G와 GO의 차이를 각각 비교했습니다. 피 <0.05는 통계적으로 유의한 것으로 간주되었습니다.
섹션> 결론
결론적으로, G와 GO는 용량 의존적 방식으로 약간의 생물학적 세포독성 효과를 갖는다. G 및 GO는 항균 특성을 가지며 용량 의존적 방식으로도 기능합니다. GO 항균 특성은 생체 내에서 G보다 훨씬 우수합니다. 50~100 μg/ml의 농도는 경미한 생물학적 독성과 주요 항균력의 균형을 유지하는 것이 좋습니다. 더욱이, 독성을 줄이기 위한 GO의 변형은 나노의학에서 G 및 GO 응용에 기여하기 위해 명확해질 필요가 있습니다.
섹션> 약어
- BMSC:
-
골수 중간엽 줄기세포
- G:
-
그래핀
- 이동:
-
산화 그래핀
- 그는:
-
헤마톡실린 및 에오신
- LB:
-
Luria Bertani 중간
- NP:
-
나노입자
- PI:
-
광자 강도
- ROS:
-
활성 산소 종
- SEM:
-
주사 전자 현미경
- TEM:
-
투과전자현미경
섹션>