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Verapamil의 세포 흡수를 향상시키는 동결건조 하이브리드 나노구조 지질 운반체:통계 최적화 및 시험관 내 평가

초록

Verapamil은 칼슘 채널 차단제이며 고혈압, 협심증 및 기타 질병의 치료에 매우 효과적입니다. 그러나 이 약물은 초회통과 효과로 인해 20~35%의 낮은 생체이용률을 갖는다. 이 연구의 주요 목적은 베라파밀 세포 흡수를 증가시키기 위한 시도로 하이브리드 베라파밀-덱스트란 나노구조 지질 운반체(HVD-NLC)를 개발하는 것이었습니다. 공식은 고전단 균질화 방법으로 성공적으로 준비되었으며 2 4 를 사용하여 통계적으로 최적화되었습니다. 완전 요인 설계. HVD-NLC 제형은 동결 보호제로서 트레할로스를 사용하여 동결 건조되었다. 결과는 최적화된 공식(VER-9)이 192.29 ± 2.98, 0.553 ± 0.075, 93.26 ±6%의 입자 크기(PS), 다분산 지수(PDI) 및 포집 효율 백분율(%EE)을 가짐을 보여주었다. , 각각. 제제에 덱스트란 설페이트를 포함시키면 모의 위액(pH 1.2) 및 모의 장액(pH 6.8)에서 베라파밀(48시간에 ~ 85%)의 방출이 연장되었습니다. 시차 주사 열량계 분석은 베라파밀과 제형의 부형제 사이에 화학적 상호작용을 나타내지 않았습니다. 광각 X선 산란 연구는 NLC에 통합된 후 비정질 형태의 약물을 입증했습니다. 투과전자현미경과 주사전자현미경 사진에서 나노입자가 구형임을 알 수 있었다. Caco-2 세포주를 사용한 세포 흡수 연구는 베라파밀 용액 및 베라파밀-덱스트란 복합체와 비교하여 HVD-NLC에서 더 높은 베라파밀 흡수를 보여주었습니다. 냉장 상태(5°C ± 3°C)에서 보관한 최적화된 제형(VER-9)은 6개월 동안 안정적이었습니다. 결론적으로, HVD-NLC는 약물의 세포 흡수를 상당히 향상시켰기 때문에 베라파밀의 잠재적인 운반체였습니다.

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배경

Verapamil은 페닐알킬아민 계열의 L형 칼슘 채널 차단제이며 α-아드레날린 수용체의 길항제입니다. 고혈압, 심실상 빈맥, 협심증, 군발성 두통의 치료에 광범위하게 사용됩니다. 생물의약품 분류 체계에 따르면 베라파밀은 1급 약물로 분류됩니다. 이 부류의 약물은 경구 투여 후 장막을 통한 흡수가 좋은 것으로 알려져 있습니다(≤ 90%). 그러나 verapamil 경구 투여량의 20~35%만이 문맥 순환을 통한 빠른 1차 통과 대사로 인해 혈액 순환으로 전달됩니다[1]. 따라서 베라파밀 세포 흡수를 향상시키고 생체 이용률을 향상시킬 수 있는 적합한 운반체를 개발하는 것이 중요합니다.

나노구조 지질 운반체(nanostructured lipid carrier, NLC)와 같은 2세대 지질 기반 나노제형은 치료제 전달에 사용할 수 있는 큰 잠재력을 보여주었다[2, 3]. NLC는 고체 지질 나노 입자(SLN)에 비해 화학적 및 물리적 안정성이 더 높으며 방출 제어 특성도 가지고 있습니다. 더욱이, NLC는 지질 매트릭스의 더 적은 정렬된 결정 격자를 형성함으로써 약물 분자에 대한 높은 로딩 용량을 나타내며, 이는 저장 중 약물의 방출을 최소화할 수 있습니다. NLC는 장 내부의 유미미크론 형성을 촉진하고 NLC의 흡수를 촉진하여 약물의 생체이용률을 증가시킬 수 있는 지질로 제조됩니다[4]. 따라서, 본 연구는 생체 이용률을 증가시킬 수 있는 약물의 세포 흡수를 개선하기 위해 하이브리드 베라파밀-덱스트란 나노구조 지질 운반체(HVD-NLC)를 개발했습니다.

대부분의 친유성 약물은 NLC에 쉽게 통합될 수 있지만 베라파밀과 같은 친수성 약물을 지질 기반 나노제형에 가두는 것은 상당히 어렵습니다. 따라서 본 연구에서는 verapamil의 캡슐화를 향상시키고 NLC에서 방출을 연장하기 위해 반대 이온 덱스트란 황산 나트륨을 사용하는 하이브리드 NLC를 준비했습니다(그림 1). HVD-NLC 제형은 고온 고전단 균질화 방법으로 제조되었으며 2 4 를 사용하여 통계적으로 최적화되었습니다. 완전 요인 설계. 연구에는 두 가지 유형의 지질, 즉 고체 지질, Compritol 888 ATO® 및 액체 지질 올레산이 사용되었습니다. 제조된 HVD-NLC는 입자 크기(PS), 제타 전위(ZP), 다분산 지수(PDI) 및 약물 포획 효율(%EE) 백분율에 대해 특성화되었습니다. 최적화된 HVD-NLC는 트레할로스를 동결 보호제로 사용하여 동결 건조되었습니다. 시험관 내 방출 프로파일은 알칼리성 및 산성 환경에서 수행되었습니다. 선택된 HVD-NLC로부터의 베라파밀의 시험관내 세포 흡수 연구는 Caco-2 세포주를 사용하여 수행되었습니다. 최적화된 제형의 안정성 연구는 3가지 다른 조건(5 °C ± 3 °C, 25 °C ± 2 °C/60% RH ± 5% RH 및 40 °C ± 2 °C/)에서 6개월 동안 수행되었습니다. 75% 상대습도 ± 5% 상대습도).

<그림>

수용성 양이온성 약물 베라파밀염산염과 반대이온 고분자 덱스트란황산나트륨의 정전기 착체 형성

방법

자료

Verapamil HCl은 Wenzhou 제약 공장(Wenzhou, China)에서 구입했습니다. Compritol 888 ATO®(Glycerol dibehenate EP-Glyceryl behenate NF)는 Gattefosse(Saint-Prist, France)에서 구입했습니다. 올레산은 R&M Chemicals(Essex, UK)에서 조달했습니다. Tween 80®(Polysorbate 80)은 Euro chemo-pharma Sdn에서 구입했습니다. Bhd.(말레이시아 페낭). Poloxamer 188(Pluronic® F-68)은 Molekula(Dorset, UK)에서 조달했습니다. Trehalose, Sephadex® G-25 및 FBS(fetal bovine serum)는 Sigma-Aldrich(St. Louis, MO, USA)에서 구입했습니다. Caco-2 세포주는 ATCC(Virginia, USA)로부터 입수하였다. 페니실린-스트렙토마이신 용액 100 X는 Biowest(Nuaillé, France)에서 구입했습니다. 트립신 0.25% 및 Dulbecco의 변형된 Eagles 배지(DMEM)는 GE Healthcare life sciences, Hyclone lab(미국 유타)에서 조달했습니다. Passive Lysis Buffer, 5X는 Promega(미국 위스콘신)에서 구입했습니다.

방법

HVD-NLC의 준비

HVD-NLC는 고온 고전단 균질화 방법으로 제조되었습니다. 지질 상은 Compritol ATO 888®로 구성되었으며 올레산은 85°C(고체 지질의 융점보다 10°C 높음)에서 가열하여 녹였습니다. 필요한 양의 베라파밀을 칭량하고 1:1 w 비율로 Tween 80®과 폴록사머 188의 혼합물을 함유하는 수상에 용해했습니다. / . 수상을 지질상과 동일한 온도로 가열하였다. 수상을 지질 상에 붓고 디지털 T25 Ultra-Turrax® 균질화기, IKA®(Staufen, Germany)를 사용하여 24,000rpm, 85°C에서 균질화했습니다. 이어서, 균질화 과정에서 덱스트란 설페이트 수용액(베라파밀에 1:1 비율)을 천천히 첨가하였다. 준비된 HVD-NLC는 실온(25 ± 2 °C)에서 냉각되도록 두었습니다.

2 4 를 사용한 공식 매개변수의 통계적 최적화 완전 요인 설계 및 바람직함 함수 접근

특성(종속변수 또는 반응)에 대한 공식화 독립변수(요인)의 영향을 최적화하고 평가하기 위해 2개 수준과 4개 변수가 있는 완전 요인 설계가 수행되었습니다(표 1). 예비 연구를 기반으로 각 독립 변수에 대한 진정한 높은 수준과 낮은 수준을 선택했습니다.

종속변수로부터 얻은 실험적 반응은 4개의 독립변수의 개별적 효과와 결합된 효과의 결과였다. 이 2단계 실험 설계는 다음 다항식 방정식에 맞는 충분한 데이터를 제공합니다.

$$ X={\upbeta}_0+{\upbeta}_1A+{\upbeta}_2B+{\upbeta}_3C+\upbeta 4D+{\upbeta}_{12} AB+{\upbeta}_{13}\mathrm{AC}+ {\upbeta}_{14}\ \mathrm{AD}+{\upbeta}_{23}\mathrm{BC}+{\upbeta}_{24}\mathrm{BD}+{\upbeta}_{34 }\mathrm{CD} $$ (1)

X 위치 종속 변수입니다. β0 는 절편입니다. β1 , β2 , β3 및 β4 독립변수 A의 계수 , B , C , 및 D 각기. β12 동안 , β13 , β14 , β23 , β24 및 β34 각각의 상호 작용(즉, AB, AC, AD, BC, BD 및 CD)입니다. 실험 결과는 Design-Expert® 소프트웨어 버전 6.0.10(Stat-Ease, Inc., Minneapolis, MN, USA)으로 분석한 후 분산 분석(ANOVA)을 통해 요인과 그 상호 작용의 중요성을 결정했습니다. 통계 분석은 p 값은 <0.05입니다.

최종 공식은 바람직함 함수 접근 방식을 기반으로 선택되었습니다. 만족도 함수는 모든 반응을 하나의 변수로 결합하여 연구된 요인의 최적 수준을 예측합니다. 따라서, 가장 낮은 입자 크기(PS) 및 다분산 지수(PDI) 및 가장 높은 제타 전위(ZP) 및 포집 효율(%EE) 값을 갖는 최적화된 제형을 선택하는 것이 바람직하다고 결정되었습니다. 바람직함 함수는 모든 응답을 공통 척도(0, 1)로 변환하고 전체 메트릭의 최적화를 위해 기하 평균으로 결합합니다. 만족도 값 1은 응답에 대해 허용 가능한 값(가장 원하는 값)을 나타내고, 만족도 값 0은 허용되지 않는 값을 나타냅니다.

입자 크기, 다분산 지수 및 제타 전위 측정

제조된 나노입자의 PS 및 PDI는 광자상관분석기(Zetasizer 1000HS/3000HS, Malvern Instrument, Malvern, UK)를 사용하여 측정하였다. ZP는 제타 전위 분석기(Zetasizer nano 시리즈, Nano Z-red 배지, Malvern Instrument, Malvern, UK)를 사용하여 결정되었습니다. 모든 샘플은 여과된 증류수(0.45μm 나일론 필터)를 사용하여 희석되었고 측정은 3중 방식으로 수행되었습니다.

포획 효율성 퍼센트 결정

유리 베라파밀-덱스트란 복합체 및 HVD-NLC를 함유하는 제조된 샘플을 Sephadex® G25를 사용하여 미니 컬럼 원심분리 방법으로 분리하였다. 1mL 부피의 샘플을 컬럼 상단에 놓은 다음 2000rpm에서 2분 동안 원심분리했습니다. HVD-NLC를 포함하는 용리액을 수집하고 동결 건조기를 사용하여 동결건조했습니다(Labconco, Free Zone Freeze Dry Systems, Kansas City, USA).

동결건조된 HVD-NLC(10mg)를 클로로포름에 용해시키고 40°C에서 질소 기체 하에 증발시켰다. 그런 다음 건조된 샘플을 1mL 증류수에 용해하고 2분 동안 볼텍싱한 다음 12,000rpm에서 5분 동안 원심분리(독일 Eppendorf)했습니다. 상층액을 수집하고 검증된 고성능 액체 크로마토그래피(HPLC) 방법을 사용하여 베라파밀의 양을 결정했습니다. %EE는 다음 방정식을 사용하여 계산되었습니다.

$$ \%\mathrm{EE}=\frac{\mathrm{무게}\ \mathrm{of}\ \mathrm{캡슐화}\ \mathrm{베라파밀}}{\mathrm{초기}\ \mathrm{무게}\ \mathrm{of}\ \mathrm{베라파밀}}\kern0.5em \times \kern0.75em 100 $$ (2)

베라파밀의 정량화를 위한 HPLC 분석은 LC 20AD 전달 펌프(Kyoto, Japan) 및 Phenomenex C18 컬럼(250 × 4.6 mm)이 장착된 Shimadzu 크로마토그래피 시스템을 사용하여 수행되었습니다. 이동상은 40:60(v /v ). 이동상의 pH는 빙초산을 사용하여 pH 6.5로 조정되었습니다. 주입 부피는 20μL이고 verapamil의 검출 파장은 278nm로 설정되었으며 유속은 1.5mL/min으로 고정되었습니다.

동결건조 연구

동결건조는 Labconco, FreeZone Freeze Dry Systems(Kansas City, USA)를 사용하여 24시간 동안 - 40°C에서 수행되었습니다. HVD-NLC의 동결 건조에 적합한 동결 보호제를 선택하기 위해 지질:동결 보호제 비율이 1:1인 만니톨, 과당, 자당, 유당 및 트레할로스를 포함하여 일반적으로 사용되는 5가지 유형의 설탕을 스크리닝했습니다. 추가 연구를 위해 증류수에서 재구성한 후 동결 건조된 제형의 평균 PS 및 PDI를 가장 낮은 평균 PS 및 PDI를 생성하는 동결 보호제가 선택되었습니다.

다음 연구에서 HVD-NLC 제제는 두 가지 방법을 사용하여 선택된 동결 보호제와 혼합되었습니다. 첫 번째 방법은 HVD-NLC 제제 제조 후 동결방지제를 첨가하는 방법으로 “균질화 공정 후”로 명명하였다. 두 번째 방법에서는 HVD-NLC 제제를 제조할 때 동결방지제를 첨가하여 "균질화 과정 중"이라고 명명했습니다. 첫 번째 방법에서는 1:1, 1:2, 1:4, 1:6 및 1:8의 여러 지질과 동결 보호제 비율을 준비하고 동결 건조했습니다. 동결건조된 HVD-NLC 제형을 여과된 증류수(0.45μm 나일론 필터)에 재분산하고 샘플을 평균 PS, PDI 및 %EE에 대해 평가했습니다. 가장 낮은 PS 및 PDI와 가장 높은 %EE를 생성하는 지질:동결 보호제 비율은 두 번째 혼합 방법에서 추가 연구를 위해 선택되었습니다.

체외 출시 연구

NLC로부터 베라파밀의 시험관 내 방출 연구는 모의 장액(pH 6.8) 또는 모의 위액(pH 1.2) 배지에 놓인 투석 백을 사용하여 수행되었습니다. 이 연구에서 2mL의 HVD-NLC 분산액을 투석 백에 채웠습니다(12,000Da MW 컷오프). 백을 밀봉한 다음 예열된 이형 매질 150mL에 담그었습니다. 방출 연구는 100rpm 교반 속도 및 37°C로 설정된 핫 플레이트 자기 교반기에서 수행되었습니다. 예정된 시간 간격인 0.08, 0.25, 0.5, 1, 2, 4, 6, 8, 10, 12, 24, 48, 72시간에 1mL의 샘플을 빼내고 동일한 부피의 새 배지로 교체했습니다. 방출된 베라파밀 농도는 HPLC에 의해 결정되었습니다.

시차 주사 열량계

Perkin-Elmer Pyris 6 DSC(Perkin-Elmer, Beaconsfield, UK)를 사용하여 시차 주사 열량계(DSC) 분석을 수행했습니다. 샘플의 무게를 측정하여(5–7 mg) 알루미늄 팬에 넣고 표준 샘플 팬 크림퍼 프레스(Perkin-Elmer, Beaconsfield, UK)를 사용하여 밀봉했습니다. DSC 곡선은 0~260°C에서 10°C/min의 속도로 기록되었습니다.

광각 X선 산란

광각 X선 산란(WAXS) θ/2θ 분석은 Cu Kα 방사선을 적용한 PANalytical X'Pert PRO MRD PW3040(Almelo, Netherlands)을 사용하여 실온에서 수행되었습니다. 샘플은 5°C/min의 스캔 속도로 2–60°C의 온도 범위에서 실행되었습니다.

투과 전자 현미경 및 주사 전자 현미경

HVD-NLC의 형태(즉, 모양 및 크기)는 (Philips CM12, Eindhoven, Netherlands)를 사용하여 투과전자현미경(TEM)으로 관찰하였다. 희석된 HVD-NLC 분산액 한 방울을 400 메쉬 구리 그리드에 놓고 2% 인텅스텐산으로 음성 염색했습니다. 준비된 샘플은 TEM 검사 전에 공기 건조되었습니다.

동결건조된 HVD-NLC의 형태는 주사전자현미경(SEM)을 사용하여 관찰되었다(Leo Supra 50 VP field Emission SEM, Oberkochen, Germany). 동결건조된 HVD-NLC 샘플을 알루미늄 스터브에 고정한 다음 스퍼터링 장치에서 15mA에서 15분 동안 금(10nm 두께)으로 코팅했습니다. 샘플은 10kV의 가속 전압으로 Oxford INCA 에너지 분산형 X선 미세분석 시스템을 사용하여 시각화되었습니다.

HVD-NLC의 세포 흡수

HVD-NLC 제제로부터의 베라파밀의 시험관내 세포 흡수 연구는 Caco-2 세포주를 사용하여 조사되었습니다. 세포를 T-25 조직 배양 플라스크에서 1% 페니실린-스트렙토마이신 용액 및 10% FBS가 보충된 DMEM 성장 배지에서 배양하였다. 그 다음, Caco-2 세포를 수집하고 세포가 융합되고 웰 플레이트의 바닥에 단층을 형성할 때까지 DMEM 완전 배지를 사용하여 웰당 60,000 세포 밀도로 48웰 플레이트에 시딩했습니다. DMEM 배지만으로 HVD-NLC, 베라파밀 용액 및 베라파밀-덱스트란 복합체를 희석하여 동일한 농도의 베라파밀을 함유하는 여러 용액을 제조했습니다. 베라파밀 용액 및 베라파밀-덱스트란 복합체를 대조군으로 사용하였다. 그 후, 48웰 플레이트에 있는 Caco-2 세포 단층의 DMEM 완전 배지를 HVD-NLC, 베라파밀 용액 및 베라파밀-덱스트란 복합체의 다른 희석액으로 교환하고 37°C에서 6시간 동안 인큐베이션했습니다. 인큐베이션 기간을 완료한 후, HVD-NLC, 베라파밀 용액 및 베라파밀-덱스트란 복합체 샘플을 웰에서 제거했습니다. PBS(phosphate-buffered saline)로 3회 세척하여 단층에서 시험 시료의 잔류물과 죽은 세포를 제거하였다. 각 샘플 웰에 수동 용해 완충액(200μL)을 첨가하여 단층 세포를 용해시켰다. 샘플을 피펫으로 제거하고 12,000rpm에서 10분 동안 원심분리하여 세포에서 베라파밀을 추출했습니다. 상층액을 수집하고 베라파밀 농도를 HPLC를 사용하여 정량화했습니다.

단기 안정성 연구

최적화된 HVD-NLC 제제의 단기 안정성 연구는 인간 의약품(ICH) 지침 Q1A(R2)에 대한 기술 요구 사항 조화를 위한 국제 위원회에 따라 수행되었습니다. 새로 제조된 동결건조된 HVD-NLC 제제(VER-9)를 3가지 다른 조건(5 ± 3 °C, 25 ± 2 °C/60 ± 5% 상대 습도(RH) 및 40 ± 2 °C/75)에 두었다. 6개월 동안 ± 5%RH). 최적화된 HVD-NLC 제제의 안정성은 0, 1, 3, 6개월에 PS, PDI, ZP 및 총 약물 함량을 측정하여 조사했습니다.

통계 분석

결과는 일원 분산 분석(ANOVA)과 사후 Tukey-HSD를 사용하여 분석되었습니다. 통계 분석은 IBM® SPSS® Statistical 소프트웨어(Version 22, NY, USA)를 사용하여 수행되었습니다. 모든 값은 평균과 표준편차(mean ± SD)로 표현하였다. 차이는 p일 때 통계적으로 유의했습니다. <0.05.

결과 및 토론

2를 사용한 분석 4 완전 요인 설계

균질화시간(A), 고형지질농도(B), 액상지질농도(C), 계면활성제 농도(D)와 같이 선택된 독립변수의 값과 선택된 반응의 결과인 PS, PDI , ZP 및 %EE는 표 2에 나와 있습니다. 각 독립 변수와 상호 작용은 ANOVA를 사용하여 통계적으로 평가되었습니다. 각 종속 변수에 대한 다항식 계수는 Eqs에 표시된 대로 각 독립 변수의 효과를 정량화하기 위해 Design-Expert® 소프트웨어에 의해 생성되었습니다. 3, 4, 5, 6. 방정식은 중요한 요소와 상호 작용만을 나타냅니다.

$$ \mathrm{PS}=185.73-7.64A-2.13C-12.03D-2.15\mathrm{AC}+2.16\mathrm{BD}-3.53\mathrm{CD} $$ (3) $$ \mathrm{PDI }=0.48-0.060C-0.029\mathrm{AC}+0.039\mathrm{CD} $$ (4) $$ \mathrm{ZP}=-45.94-2.06C-1.41D+0.91\mathrm{BD}-1.09 \mathrm{CD} $$ (5) $$ \%\mathrm{EE}=81.40-4.31A+8.45D-2.13\mathrm{AD}+1.90\mathrm{BD} $$ (6)

여기서 A 균질화 시간(분), B 고체 지질 농도(mg), C 는 액체 지질 농도(mg), D 는 계면 활성제 농도(mg)입니다. 방정식에서 각 요인 또는 상호 작용 요인 앞의 양수 및 음수 기호는 각각 상승 효과 또는 적대 효과를 나타냅니다. 반응 매개변수에 대한 각 요인 또는 요인 상호작용의 동시 효과를 관찰하기 위해 반응 표면 플롯이 생성되었습니다.

평균 입자 크기에 대한 변수의 영향

식과 같이 3, 요소 A , C , 및 D 입자 크기(PS)에 길항 효과가 있습니다. 균질화 시간(인자 A )는 동시에 NLC의 PS의 상당한 감소와 관련이 있습니다(p <0.05). 이것은 아마도 지질 소구를 더 작은 입자로 효율적으로 분해하는 균질화의 높은 전단력 때문일 것입니다. 유사하게, 액체 지질 농도(C )는 NLC의 PS를 동시에 감소시키는 것으로 밝혀졌습니다. 이는 올레산이 Compritol 888 ATO®와 결합하여 시스템의 점도와 표면 장력을 감소시켜 NLC의 더 작은 입자 크기를 생성하는 능력 때문일 수 있습니다. 액체 지질이 고체 지질과 결합될 때 시스템의 점도를 감소시키는 능력은 또한 Jenning et al. 그들이 SLN 분산을 준비할 때 [5]. 저자는 지질 매트릭스 조성물에서 액체 지질 농도를 0에서 38%로 증가시키면 입자 크기를 감소시킬 수 있음을 관찰했습니다. 또한, 계면활성제 농도(D ) 시스템에 존재하는 더 많은 양의 계면활성제가 제형의 총 지질 함량을 쉽게 유화시켜 더 작은 나노입자를 형성하기 때문에 PS가 감소합니다.

그림 2는 중요한(p NLC의 PS에 대한 요인(AC, BD 및 CD) 상호작용의 <0.05) 효과. 요인(BD)의 긍정적인 영향과 요인(AC 및 CD 상호작용)의 부정적인 영향은 NLC 입자 크기에 상당한 영향을 미치는 것으로 나타났습니다. 인자(AC)의 부정적인 영향은 균질화 시간이 길고 액체 지질 농도가 높을수록 PS가 감소한다는 것을 보여주었습니다. NLC 제형에서 더 높은 농도의 고체 지질과 계면활성제 사이의 상호작용(BD 상호작용)은 입자 크기에 상당한 긍정적인 영향을 나타내었고, 이는 더 큰 입자 크기를 초래했습니다. 대조적으로, 더 높은 농도의 액체 지질과 계면활성제 사이의 상호작용(CD 상호작용)은 더 작은 크기가 생성되는 입자 크기에 상당한 부정적인 영향을 보였습니다.

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유의성을 나타내는 반응 표면 플롯(p <0.05) 균질화 시간, 액체 지질 농도, 계면활성제 농도 및 a 간의 상호작용 효과 AC, b BD 및 c HVD-NLC의 PS에 있는 CD. A 균질화 시간, B 고체 지질, C 액체 지질, D 계면활성제

변수가 PDI에 미치는 영향

Eq. 도 4에 도시된 바와 같이, 올레산은 PDI에 부정적인 영향을 미치는 것으로 나타났으며, 이는 올레산 농도가 증가하면 PDI 값이 낮아지고 NLC 입자의 더 나은 분포로 이어질 것임을 의미합니다. NLC에 대한 올레산의 유사한 효과가 일부 연구에서도 관찰되었습니다[6]. 그림 3은 균질화 시간과 액체 지질 농도 사이의 상호작용(AC 상호작용)을 보여줍니다. 이 상호작용은 PDI에 유의한 부정적인 영향을 보였다. 이는 균질화 시간이 길고 액체 지질 농도가 높을수록 PDI 값이 감소한다는 것을 의미합니다. 또한, 액체 지질과 계면활성제 농도 간의 상호작용(CD 상호작용)은 PDI 값에 상승적인 효과를 나타냈다. 따라서, 액체 지질 및 계면활성제 농도를 동시에 증가시키면 PDI 값이 증가하고 덜 균질한 HVD-NLC 입자가 생성됩니다. 이는 최적화된 값을 초과하는 계면활성제 농도의 추가 증가로 인해 나노입자의 외부 표면에 계면활성제가 축적되어 PDI 값이 증가할 수 있기 때문일 수 있습니다. 동일한 패턴이 Shamma et al.에 의해서도 관찰되었으며, 이에 따라 계면활성제 농도가 증가하면 NLC의 PDI 값이 증가합니다[7].

<그림>

유의미한(p <0.05) 액체 지질 농도의 효과와 a 간의 상호작용 AC 및 b HVD-NLC의 PDI에 있는 CD. A 균질화 시간, C 액체 지질, D 계면활성제

ZP에 대한 변수의 영향

HVD-NLC 제형은 글리세릴 베헤네이트(Compritol 888 ATO®의 지방산), 올레산 및 덱스트란 설페이트 잔기의 이온화로 인해 음전하를 띠었습니다. 식을 기반으로 합니다. 도 5에 도시된 바와 같이, 올레산의 양을 증가시키면 나노입자에 부정적인 영향을 미치고 결과적으로 나노입자의 음전하를 증가시켜 HVD-NLC의 ZP를 증가시킨다. 이것은 아마도 올레산(액체 지질)에 있는 풍부한 카르복실기의 과도한 이온화 때문일 수 있습니다[8]. 더욱이, 글리세릴 베헤네이트(고체 지질)도 ZP 값에 부정적인 영향을 미치며, 농도를 증가시키면 나노입자의 ZP가 증가합니다. 이는 글리세릴 베헤네이트에서 카르복실산의 더 높은 이온화로 인해 나노입자의 외부 표면에서 더 높은 음전하를 띠기 때문입니다.

BD 상호작용은 NLC의 ZP에 상당한 양의 영향을 미치는 반면 CD 상호작용은 음의 영향을 나타냈다(그림 4). 고체 지질의 농도를 높이고 계면 활성제의 농도를 낮추면 나노 입자의 음전하가 감소하고 ZP 값이 감소합니다. 아마도 이 단계에서 더 낮은 계면활성제 농도는 고체 지질의 총량을 이온화할 수 없어 나노입자 표면의 음전하를 감소시켜 HVD-NLC의 ZP를 감소시킬 수 있습니다. 더욱이, 액체 지질 및 계면활성제의 농도를 동시에 증가(CD 상호작용)하면 HVD-NLC의 ZP 값이 상당히 증가할 것입니다. 이는 제형에 더 높은 농도의 계면활성제가 존재하면 더 많은 카르복실산이 이온화되기 때문입니다.

<그림>

유의미한(p <0.05) 액체 지질 농도, 계면 활성제 농도 및 a 간의 상호 작용 효과 BD 및 b HVD-NLC의 ZP에 있는 CD. 고체 지질, C 액체 지질, D 계면활성제

%EE에 대한 변수의 영향

방정식 6은 균질화 시간을 증가시키면 상당히 (p <0.05) 약물의 %EE를 감소시킵니다. 더 긴 균질화 시간은 나노입자의 외부 표면에 부착된 약물 분자를 벗겨내거나 벗겨낼 수 있으며, 이는 HVD-NLC에서 약물의 더 낮은 %EE를 초래합니다. 대조적으로, 계면활성제 농도를 증가시키면 HVD-NLC에서 약물의 더 높은 %EE가 발생했습니다. 이것은 더 높은 계면활성제 농도가 NLC의 외부 표면 코팅을 증가시켜 약물의 일부가 그 안에 갇힐 수 있기 때문일 수 있습니다. Zhuang et al. 및 Das et al. 지질 격자 내부와 나노 입자의 외부 표면에서 약물 분자의 가용화를 위해서는 적절한 농도의 계면 활성제가 필수적이라고 제안했습니다[9, 10].

그림 5에서 볼 수 있듯이 AD 상호작용은 유의미한(p <0.05) 부정적인 영향으로 균질화 시간을 늘리고 계면활성제의 양을 줄이면 HVD-NLC에서 약물의 %EE가 낮아집니다. 대조적으로, 고체 지질과 계면활성제 농도 사이의 상호작용(BD 상호작용)은 약물의 %EE에 긍정적인 영향을 나타냈다. 따라서, 고체 지질 및 계면활성제의 농도를 증가시키면 HVD-NLC에서 약물의 %EE가 증가할 것입니다. 이것은 아마도 과량의 약물 분자를 가용화하는 더 높은 계면활성제 농도 때문일 것입니다. NLC.

<그림>

유의미한(p <0.05) 균질화 시간, 액체 지질 농도, 계면활성제 농도 및 a 간의 상호작용 효과 광고 및 b HVD-NLC에서 베라파밀의 EE에 대한 BD. A 균질화 시간, B 고체 지질, D 계면활성제

바람직함 함수를 사용하여 최적화된 HVD-NLC 선택

코드 번호가 VER-9, VER-11, VER-13 및 VER-15인 HVD-NLC 공식은 각각 0.863, 0.852, 0.811 및 0.840의 더 높은 만족도 값을 가졌습니다. 이 공식은 만족도 값이 1에 가까웠기 때문에 추가 연구를 위해 선택되었습니다. 선택한 공식에 대한 모든 응답의 개별 및 결합된 만족도 함수가 그림 6에 나와 있습니다. 이들의 평균 PS, PDI, ZP 및 %EE 49.16 ± 1.55 및 93.95 ± 4.10 98.81 ± 1.01 각각

에 - 46.73 ± 1.13 -. 제형은 0.451 ± 0.033, 0.501 ± 0.019로, 190.3 ± 8.22 173.46 ± 0.757까지의 범위에 있었다 <사진>

Bar graph displaying the individual and combined desirability of several responses on selected HVD-NLCs formulations. VER-9, b VER-11, c VER-13, and d VER-15

Lyophilization Study

Lyophilization is one of the commonly used methods in the pharmaceutical field to change aqueous formulation into the dried form to prolong the physical and chemical stability of the nanoparticle during storage [11, 12]. However, the lyophilization step produces various stresses to the sample during the process. So, the need of cryoprotectant is essential to avoid the stress condition and protect the sample. Among the screened cryoprotectants, trehalose was found to be the most suitable one for protecting the HVD-NLCs formulations from aggregation after the lyophilization process. The HVD-NLCs formulations protected with trehalose had the smallest particle size and lowest PDI (Table 3). Trehalose offers many advantages over other cryoprotectants including less chemical interactions and exhibit higher glass transition temperature which may help to prolong the stability of nanoparticles. Furthermore, trehalose has been demonstrated as an efficient cryoprotectant for freeze drying of Compritol 888 ATO® (Glyceryl behenate) in the lipid-based nanoparticles [13, 14]. Thus, in the present study, trehalose was selected as cryoprotectant for the HVD-NLCs formulations.

In the next study, different ratios of trehalose were used in the HVD-NLCs formulations after or during the homogenization process. Table 4 shows the effects of different ratios of trehalose added into the formulations after homogenization on PS, PDI, and %EE.

The mean PS was found in the nano size range, while PDI was < 1 in all ratios of lipids to trehalose used in the study. However, the %EE of verapamil was decreased significantly with increasing the ratio of trehalose to lipids. The %EE of lipid:trehalose at the ratio of 1:1 was significantly higher than the lipid:trehalose ratio of> 1:1. Increasing the amount of trehalose beyond the lipid trehalose ratio of 1:1 enhanced the removal of verapamil from the verapamil-dextran sulfate complex. This is possibly due to the interaction between trehalose and dextran at the outer surface of nanoparticles, which promotes the displacement of verapamil from the verapamil-dextran sulfate complex and hence, lowers the %EE of drug in the HVD-NLCs. The interaction between trehalose and dextran takes place due to the formation of sugar-salt complex (trehalose-dextran complex), in that the trehalose (sugar) competes with cationic verapamil and forms complex with polyanionic dextran [15]. Miller et al. measured the viscosity and glass transition temperature of trehalose with boric acid and proposed the formation of chemical complex between trehalose and borate ion (B(OH)4 - ) [15]. Therefore, based on the obtained results, the lipid to trehalose ratios of 1:1 and 1:2 were selected for the next study of trehalose addition during homogenization. Table 5 shows that the results of PS, PDI, and %EE were significantly better when trehalose were added during homogenization. This could be due to better mixing of trehalose in the HVD-NLCs formulation by the homogenization process. It is evident from the data that there was no significant difference in the %EE of lipid:trehalose ratios of 1:1 and 1:2. Therefore, formulation VER-9 and VER-11 at lipid:trehalose ratio of 1:1 was selected for further studies.

In Vitro Release of HVD-NLCs

The release profile of verapamil solution from the selected HVD-NLCs formulations (VER-9 and VER-11) in SGF and SIF are shown in Fig. 7. The release profile of verapamil from the VER-9 and VER-11 formulations was significantly longer than verapamil solution in both SGF and SIF media. Verapamil was loaded as an ionic complex with dextran sulfate in the HVD-NLCs formulation. This could be the reason for the sustained release of verapamil from the HVD-NLCS. The formulations released about ~ 85% of verapamil after 48 h and the drug had a prolonged release profile up to 72 h. On the other hand, the verapamil solution released approximately 99% of verapamil within 4 h. The release profiles of the selected formulations VER-9 and VER-11 were found almost similar in SGF and SIF release media. However, the release of verapamil from VER-9 was found slightly better as compared to VER-11 in the SGF release medium. The percentage cumulative release of verapamil at 72 h from VER-9 (95.91 ± 1.40) was found significantly higher as compared to VER-11 (90.67 ± 1.16) in the SGF medium. Therefore, VER-9 was selected as a final formulation and proceeded for further investigations.

Cumulative percentage of verapamil released in a SIF (pH 6.8) and b SGF (pH 1.2) release media for 72 h

DSC Study

The DSC analysis of verapamil, dextran sulfate, Compritol 888 ATO®, poloxamer 188, trehalose, physical mixture (including Compritol 888 ATO®, poloxamer 188, trehalose, verapamil, and dextran sulfate), lyophilized blank formulation (Placebo), and lyophilized HVD-NLCs formulation (VER-9) are shown in Fig. 8. Verapamil, dextran sulfate, Compritol 888 ATO®, poloxamer 188, and trehalose had the melting peak at 144.96 °C, 220.41 °C, 72.46 °C, 50.80 °C, and 100.13 °C, respectively. The thermograms showed that there was no significant shift in the peaks of physical mixture, lyophilized blank formulation, and HVD-NLCs formulation (VER-9) when compared to the individual peak components such as Compritol 888 ATO®, poloxamer 188, trehalose, verapamil, and dextran sulfate. This indicated the physical compatibility between the components. The endothermic peak of verapamil at 144.96 °C was no longer seen in the thermogram of HVD-NLCs formulation (VER-9) (Fig. 8f), which could be due to verapamil that had changed to amorphous form when incorporated in the HVD-NLCs matrix [16].

DSC thermograms of a Compritol 888 ATO, b Polomxamer 188, c verapamil HCl, d dextran sulfate, e trehalose, f verapamil HCl and dextran sulfate physical mixture, g physical mixture (including Compritol 888 ATO, poloxamer 188, trehalose, verapamil, and dextran sulfate), h placebo, and i HVD-NLCs formulation (VER-9)

WAXS Study

The WAXS/2θ scans of pure verapamil, dextran sulfate, bulk Compritol 888 ATO®, trehalose, lyophilized blank formulation (containing Compritol 888 ATO®, oleic acid, poloxamer 188, Tween 80®, trehalose, and dextran sulfate), and lyophilized HVD-NLCs formulation (VER-9) are shown in Fig. 9. The diffraction peaks of pure verapamil showed specific crystalline nature of the drug at 2θ scattered angles 14.42°, 16.67°, 17.07°, 18.07°, 18.82°, 20.22°, 23.77°, and 26.27° [17]. However, the WAXS/2θ scans of HVD-NLCs formulation (VER-9) showed that the peaks of verapamil diminished indicating a decrease in the crystallinity of the drug when incorporated in the lipids of HVD-NLCs. The scan also showed the predominant peaks at 2θ scattered angles 12.47°, 15.17°, 16.87°, 21.07°, and 23.82° which possibly attributed to the crystalline structure of Compritol 888 ATO® and trehalose because none of these peaks showed similarity with any of the pure verapamil peaks [10]. The results suggested that verapamil was in the amorphous form when incorporated in the HVD-NLCs formulation. The Compritol 888 ATO® revealed polymorphic crystalline transformation upon heating, whereby it changed to a more stable form, and showed reduced intensity peaks at 21.1° and 23.3° in the HVD-NLCs and blank formulations. The WAXS pattern of pure dextran sulfate indicated its amorphous form.

X-ray patterns of a lyophilized HVD-NLCs formulation (VER-9), b lyophilized blank formulation, c trehalose, d dextran sulfate, e verapamil HCl, and f Compritol 888 ATO

Electron Microscopic Examinations

The particle shape and size of the HVD-NLCs formulation (VER-9) were examined using the electron microscope. The liquid preparation of HVD-NLCs formulation (VER-9) observed under transmission electron microscope (TEM) showed that the particles had a spherical shape with the size less than 200 nm (Fig. 10). In contrast, observation under scanning electron microscope (SEM) revealed that the nanoparticles no longer had a spherical shape following lyophilization of the formulation without trehalose. However, the cryoprotective effect of trehalose could be seen when it was incorporated in the HVD-NLCs formulation (VER-9). The SEM image indicated that the trehalose helped to protect the structure of the nanoparticle to such extent when compared to the lyophilized formulation without the cryoprotectant (Fig. 11).

TEM image of VER-9 before lyophilization

SEM images of VER-9 formulation a without trehalose; with trehalose

Cellular Uptake Study of HVD-NLCs

Caco-2 cells have been extensively used to study drugs intestinal cellular uptake [18]. The Caco-2 cells lines is spontaneously differentiating to form monolayer which has significant morphological and biological resemblance to the intestinal epithelium [19]. Several researchers have reported the in vitro cytotoxicity studies of Compritol ATO 888® [20], oleic acid [21, 22], Tween 80® [23, 24], and poloxamer 188 [25]. These substances were used as excipients in the optimized formulation of HVD-NLCs (VER-9). Based on their finding, these excipients were safe within the concentration used, the cell line type, and cell density that have been employed in the present study. The concentration of verapamil in the samples of VER-9, verapamil solution, and verapamil-dextran complex used in the cellular uptake study was in the range of 10.03 μg/200 μL to 30.1 μg/200 μL. It was found that the verapamil cellular uptake was increased with increasing the verapamil concentration in the samples. The cellular uptake values of verapamil from VER-9, verapamil solution, and verapamil-dextran complex were increased from 6.45 ± 2.62 to 15.92 ± 4.78 μg, 0.89 ± 0.28 to 1.46 ± 0.65 μg, and 0.064 ± 0.019 to 0.118 ± 0.003 μg, respectively (Fig. 12). The verapamil cellular uptake from the VER-9 formulation was 10.90- and 134.91-fold higher than the verapamil solution and verapamil-dextran complex, respectively. The results indicated that verapamil was passively transported from HVD-NLCs, verapamil solution, and verapamil-dextran complex in the caco2-cells. A similar finding of higher cellular uptake of drugs from a lipid-based nanoformulation was reported [26].

In vitro model of Caco-2 cell line showing cellular uptake of HVD-NLCs (VER-9), verapamil solution, and verapamil-dextran complex (mean ± SD, n =3)

Caco-2 cells act similarly as cell in animals when stimulated by fatty acid. van Greevenbroek et al. suggested that the incorporation of long-chain unsaturated fatty acids (e.g., oleic acid and linoleic acid) into the Caco-2 cells stimulate the secretion of very low-density lipoproteins (VLDL) and chylomicrons. In contrast, administration of saturated fatty acids primarily secretes intermediate- and low-density lipoproteins (IDL and LDL) [27]. Similar findings of increasing chylomicron secretion by the long-chain fatty acids were also reported by Caliph et al. in animal model [28]. In the present investigation, the long-chain fatty acids (Compritol 888 ATO® and oleic acid) used in the preparation of the HVD-NLCs may also stimulate the secretion of chylomicron, and hence increase the cellular uptake of the model drug.

Stability Study

The lyophilized VER-9 formulation was found stable for 6 months at refrigerated condition (5 ± 3 °C) (Table 6). There were no significant differences in the PS, PDI, ZP, and %EE after 6 months of stability study at storage temperature of 5 ± 3 °C. However, the VER-9 formulation was not stable after 1-month storage at the temperatures of 25 ± 2 °C/60 ± 5%RH and 40 ± 2 °C/75 ± 5% RH. The PS and PDI were increased significantly, while the total drug content decreased significantly. After 1 month of stability study, the samples were not measurable due to aggregation and sticky behavior of the nanoparticles.

Conclusion

The lyophilized HVD-NLCs formulation was successfully developed and optimized. The lipid carriers had prolonged the release of verapamil from the HVD-NLCs formulation. The formulation was in the nano size range and stable for 6 months at 5 ± 3 °C. The cellular uptake of verapamil lipid formulation (NLCs) was found higher than the non-lipid formulations. This suggested that the NLCs as a lipid carrier for verapamil may play an important role in improving the absorption of the drug.

약어

%EE:

Percentage of entrapment efficiency

DMEM:

Dulbecco’s modified Eagles medium

DSC:

시차 주사 열량계

FBS:

Fetal bovine serum

HVD-NLCs:

Hybrid verapamil-dextran nanostructured lipid carriers

ICH:

The international council for harmonization of technical requirements for pharmaceuticals for human

IDL:

Intermediate density lipoproteins

LDL:

Low density lipoproteins

NLCs:

Nanostructured lipid carriers

PBS:

Phosphate-buffered saline

PDI:

다분산 지수

PS:

Particle size

RH:

Relative humidity

SEM:

주사 전자 현미경

TEM:

투과 전자 현미경

VLDL:

Very low-density lipoproteins

WAXS:

Wide-angle X-ray scattering

ZP:

Zeta potential


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