화학적 독성이 감소된 식물 합성 나노 입자(NPs)는 전 세계적으로 집중되고 있으며 최근 나노 기술의 필수 구성 요소가 되었습니다. 우리는 섬유 산업에서 합성 살균제 및 촉매제를 대체하기 위해 녹색 식물 화학적 (생강 및 마늘) 환원 NiO-NPs를 준비했습니다. NP는 자외선 가시광선 분광법(UV-Vis), X선 회절법(XRD), X선 광전자 분광법(XPS), 푸리에 변환 적외선 분광법(FTIR), 에너지 분산 X선 분광법(EDS)을 사용하여 특성화되었습니다. ), 주사 전자 현미경(SEM) 및 투과 전자 현미경(TEM). 나노입자의 합성은 생강의 경우 16–52 nm, 마늘의 경우 11–59 nm 범위의 크기로 350 nm에서 강한 흡수를 갖는 XRD 및 UV-Vis에 의해 확인되었습니다. 주사전자현미경과 투과전자현미경은 입방체 이상 구형 NP로 다형성을 확인했다. 더욱이, NiO-NPs를 합성하기 위해 통합된 마늘과 생강 추출물(1:3.6 ml)의 정확한 양은 FTIR에 의해 성공적으로 확인되었습니다. 마늘에 의해 식물화학적으로 감소된 NP는 다중 약물 내성 황색 포도구균에 대한 향상된 살균 활성을 나타냄 증가하는 농도(0.5, 1.0 mg/50 μl)에서 메틸렌 블루(MB) 염료를 효율적으로 분해합니다. 결론적으로, 녹색 합성 NiO-NPs는 산업적 규모로 선택될 수 있는 환경 친화적인 촉매제 뿐만 아니라 약물 내성을 해결하기 위해 임박한 활동가입니다.
나노기술 물질은 크기를 제어하여 재료를 엔지니어링할 수 있는 능력을 제공하는 1-100 nm 이상의 치수 크기로 영향을 미칩니다[17]. 나노입자는 의학을 포함한 다양한 분야에서 독특한 화학적, 물리적, 생물학적 특성으로 인해 큰 주목을 받고 있습니다. 나노미터 규모에서 크기를 변경하여 속성을 쉽게 변경할 수 있습니다[47].
니켈(Ni) 및 산화니켈(NiO) 나노입자는 에너지 기술, 자기, 생물의학 및 전자공학에서 특정한 자기, 촉매 및 전자 특성으로 인해 매우 중요합니다[9, 26, 35]. 3.6~4.0 eV의 넓은 밴드 갭과 입방 격자 구조를 갖는 NiO는 p형 반도체로 인해 잠재력이 있다. 이러한 높은 화학적 안정성, 초정전용량 특성, 전자전달능력 및 전기촉매를 갖는 나노입자는 생물의약 및 광촉매, 항염, 항균 활성에 이용되고 있다[8, 10, 11, 45]. 전염병, 특히 항생제 내성(MDR)의 출현은 전 세계적으로 공중 보건을 황폐화시켰습니다. 일반적으로 병원성 그람 양성(G + ve) 및 그람 음성(G - ve) 박테리아 균주는 모두 주요 공중 보건 위협에 속합니다.
낙농산업에서 소의 유선염은 우유의 화학적, 미생물적, 물리적 변화와 유두 선 조직의 병리학적 변화를 특징으로 하는 경제적 영향이 큰 문제가 되는 주요 질환이다[6, 19]. 유선염의 병인학에는 감염원, 즉 박테리아, 바이러스 및 진균이 포함되며 가장 중요한 것은 박테리아이며 주요(연쇄상 구균, 황색 포도구균 , 코리네박테리움 피오게네스 , 및 대장균군 ) 및 경미한 병원체(Corynebacterium bovis 및 응고효소 음성 포도상구균 ) [25]. 다중 약물 내성 그람 양성 및 그람 음성 세균 균주의 출현은 공중 보건에 중대한 위협이 되고 있습니다[23, 32].
Zingiber 공식 (생강)은 아유르베디아(Ayurvedia)와 우나니(Unani)의 중요한 성분이며 한약재는 진기베롤(zingiberol), 모노테르펜(monoterpene), 세스퀴테르펜(sesquiterpene), 세스퀴테르펜 탄화수소 [12, 13, 43]. 그러나 Allium sativum (마늘)은 유기 황 성분, 즉 알릴 설파이드 그룹, 알린, 아조엔, 알릴 시스테인 및 알리신과 비타민, 인지질, 플라보노이드, 아미노산 및 의학적 특성을 나타내는 지방산과 같은 기타 성분을 포함합니다. [14, 24] . 우리는 식물화학적으로 환원된 Ni 금속 산화물 나노입자가 MDR(S. aureus ), 소 유방염의 분리주이며, 이것은 파키스탄에서 위에서 언급한 에이전트에 대한 수의 연구 분야의 첫 번째 보고서가 될 것입니다.
현재 연구는 식물화학적으로 환원된 NiO-NPs가 MDR(S. aureus ), 소 유방염의 분리물입니다.
질산니켈 [Ni(NO3 )2 ], 수산화나트륨(NaOH), 메틸렌 블루(MB) 및 수소화붕소나트륨(NaBH4 )의 분석 등급은 Sigma-Aldrich®에서 구입했으며 신선한 생강과 마늘 뿌리는 현지 시장에서 수집했습니다. 뿌리는 추가 처리를 위해 일정한 무게를 달성하기 위해 그늘에서 건조되었습니다. Bioanalyse®(터키)에서 항생제 디스크를 구입했습니다. 사용된 박테리아 성장 배지는 TM Media(Titan Biotech Ltd, India)의 분석 등급이었습니다.
생강과 마늘 뿌리를 전기 그라인더를 사용하여 미세 먼지로 분쇄하고 플라스틱 용기에 보관했습니다. 뿌리 분말을 70°C에서 30분 동안 격렬하게 교반하면서 조절된 양의 증류수-DIW(1:10)와 혼합했습니다. 추출물을 냉각하고 Whatman No.1 여과지로 여과한 다음 추가로 사용할 때까지 4°C에서 보관했습니다(그림 1).
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생강과 마늘 추출 및 식물화학적으로 환원된 NiO-NPs의 합성 방식
다양한 비율(1.2, 1.8, 2.4, 3.0, 3.6, 4.2 ml)의 생강 및 마늘 수성 추출물을 계속 교반하면서 질산니켈(0.1 M)에 첨가하였다. 교반된 용액 pH 12는 NaOH(2 M)를 사용하여 90°C에서 2 시간 동안 유지되었습니다. 형성된 침전물을 10,000 rpm에서 10분 동안 원심분리하고 DIW로 세척하고 그림 1과 같이 90°C의 열풍 오븐에서 밤새 건조시켰다.
최대 흡수(ƛ 최대 ) 합성된 NPs는 200–800 nm 파장에서 UV-Visible 분광 광도계(Genesys 10 S)로 스캔되었습니다. 상 구성 및 구조 정보는 λ의 Cu Kα1 방사선이 장착된 2θ 범위(10–80°)를 갖는 X선 회절(XRD) BUNKER D2 페이저로 분석되었습니다. =1.540 Å. 녹색 합성 NiO-NP 작용기는 푸리에 변환 적외선 분광법(ATR-FTIR)을 사용하여 기록되었습니다. 나노입자의 크기, 모양 및 원소 분석은 전계방출전자현미경(FESEM)과 투과전자현미경 Hitachi H7100FA(TEM)로 분석하였다. X선 광전자 분광법(XPS)을 사용하여 해당 밴드 갭을 갖는 샘플 구성을 조사했습니다.
파키스탄 펀자브의 민간 및 공공 부문 동물 병원과 농장에서 수집한 임상적으로 양성인 소 우유 샘플을 5% 양 혈액 한천에서 배양하고 37°C에서 24–48 시간 동안 배양했습니다. 수득된 특징적인 콜로니를 만니톨 염 한천(MSA) TM Media(Titan Biotech Ltd, India)에 삼중선으로 추가 스트리킹하여 정제된 S를 분리했습니다. 구균 .
Burgey's manual of determinative bacteriology의 설명에 따라 형태학적 특성, Gram 염색 및 생화학적 절차(coagulase 및 catalase test)를 통해 세균 집락을 식별했습니다.
특징적인 집락의 항생제 감수성은 MDR S의 분리를 위한 NCCLS(National Committee for Clinical Laboratory Standards) 지침에 따라 디스크 확산 테스트로 평가했습니다. 구균 . 옥시테트라사이클린(30 μg), 타이로신(30 μg), 겐타마이신(10 μg), 시프로플록사신(5 μg), 트리메토프림 + 설파메톡사졸(1.25 μg + 23.75 μg)에 MHATONA-무균제를 포함하는 항생제 디스크 (Titan Biotech Ltd, 인도)1 × 10 8 CFU/ml는 37°C에서 24시간 동안 유지되었습니다[7]. 최소 3가지 항생제에 내성이 있는 것으로 밝혀진 박테리아를 MDR로 선언했습니다[28].
식물화학적으로 환원된 NiO-NPs의 시험관 내 항균 활동 잠재력은 MDR S의 10가지 대표적인 분리주에 대해 한천 웰 확산 방법으로 평가되었습니다. 구균 매스틱 우유에서 채취합니다. 배양 접시를 1.5 × 10 8 으로 닦았습니다. CFU/ml(0.5 McFarland 표준) MDR S. 구균 MSA에. 멸균 코르크 천공기를 사용하여 직경 6 mm의 웰을 형성했습니다. 다양한 농도의 생강, 마늘 및 녹색 합성(식물화학적 환원) NiO-NPs의 개별 수성 추출물을 적용했습니다. 수성 추출물은 (10 mg/100 μl) 및 (50 mg/100 μl) 및 NiO(0.5 mg/50 μl) 및 (1.0 mg/50 μl) 농도로 사용되었습니다. 시프로플록사신(0.005 mg/50 μl)은 양성 대조군으로, DIW는 음성 대조군(50 μl)으로 사용되었습니다.
항균 효능은 억제대(mm) 크기로 계산하고 억제대 직경은 SPSS 20을 사용하여 일원 분산 분석(ANOVA)으로 통계적으로 분석했습니다.
합성된 NiO 추출물의 촉매 평가를 위해 새로 제조된 수성 소듐 보로하이드라이드(300 μl)를 3 ml의 메틸렌 블루(0.)와 혼합했습니다. 03 × 10 −3 마) 솔루션. 이어서, 원하는 농도의 300 μl 콜로이드 샘플을 용액에 첨가하였다. 메틸렌 블루 염료(MB)의 밝은 파란색은 그림 2와 같이 염료가 류코메틸렌 블루로 분해되는 것을 나타내면서 사라졌습니다. UV-Vis 분광 광도계를 사용하여 200–800 nm 사이에서 흡수가 관찰되었습니다.
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녹색 합성 NP에 의한 MB에서 LMB로의 촉매 환원에 대한 개략도
200–600 nm 사이의 생강과 마늘 수성 추출물에 의해 식물화학적으로 환원된 NiO의 광학적 특성은 그림 3a, b에 나와 있습니다. 최대 흡광도(λ 최대 NiO-NPs에서 350 nm(1:3.6 ml) 부근에서 관찰되었으며, 이는 청색 이동을 동반한 추출물 농도와 함께 증가했습니다. 생강과 마늘 추출물의 흡수 피크는 각각 275 및 280 nm 부근에서 나타났습니다. 반응 혼합물의 급격한 색상 변화는 뿌리 추출물을 혼합한 후 와인 레드에서 밝은 녹색으로 나타났습니다. 피크 넓이는 강한 흡수 밴드에 의해 밝혀진 바와 같이 NiO의 추출물 농도와 함께 원자가 밴드에서 전도 밴드로의 입자 응집 및 전자 전이를 나타냅니다[20]. 따라서 도 3a에서 b 결과는 최적화된 값(1:3.6 ml) 이상으로 추출물 부피가 증가하거나 감소함에 따라 합성된 NP의 흡수 감소를 보여주었다. 밴드 갭은 Tauc의 플롯(Eq. 1)을 사용하여 계산되었습니다.
$$ \left(\alpha hv\right)=B{\left( hv-{E}_g\right)}^{\raisebox{1ex}{$1$}\!\left/ \!\raisebox{-1ex }{$2$}\right.} $$ (1) <그림>
아 –d 생강과 함께 합성된 녹색 NiO-NP의 흡수 스펙트럼(a ) 및 마늘 추출물(b ). 생강에 의해 식물화학적으로 환원된 NiO의 밴드갭(c ) 및 마늘(d ) 각각
α 흡수 계수, h 플랑크 상수, B 상수, υ 광자 주파수로 알려져 있으며 E g 에너지 밴드갭이다. (αhʋ ) 1/2 광자 에너지(hʋ ). x 접선의 절편 -축이 기록되어 그림 3c, d와 같이 샘플의 밴드 갭 에너지를 제공합니다. 밴드 갭 에너지의 변화는 생강을 4.15에서 3.1 eV로, 마늘을 3.5에서 3.0 eV로 각각 NiO에 도핑할 때 결정되었습니다(그림 3c, d).
NiO-NPs의 결정도, 크기 및 상 조성은 그림 4a, b와 같이 XRD에 의해 확인되었습니다. 2θ 값 37.10°, 43.32°, 62.81° 및 76.51°의 피크는 (111), (200), (220) 및 (311)에 해당합니다(JCPDS 카드 번호:00-047-1049)(그림 4a , b) [30] 참조. 피크 강도는 D로 계산된 평균 크기가 32.9 nm인 육각형 및 면심 입방체(fcc) NiO를 나타냅니다. =생강의 경우 0.9λ/βcosθ, 마늘의 경우 식물화학적으로 환원된 NiO-NPs의 경우 29.92 nm. 넓은 피크는 샘플에서 산소 공간과 국부적 격자 무질서의 존재를 나타냅니다[38]. 캡핑제로 작용하는 생강(플라보노이드, 알칼로이드, 탄닌, 사포닌)과 마늘 수성 추출물(알리신, 알릴 설파이드, 알린, 지방산, 당지질, 페놀, 아미노산, 플라보노이드)의 다양한 파이토케미컬은 금속 산화물 나노입자 [14, 46].
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생강에 의해 식물화학적으로 환원된 NiO의 다양한 농도의 XRD 패턴(a ) 및 마늘(b ) 및 표준 NiO(c )
생강과 마늘 뿌리에서 생합성된 NiO의 기록된 FTIR 스펙트럼은 그림 5a, b에 나와 있습니다. 3380 cm −1 에서 정교한 광범위한 흡수 OH에 해당하고 피크 넓이는 (N-H) 아민 스트레칭 빈도를 갖는 카르보닐기를 나타냅니다[50]. 2313 cm −1 에서의 급격한 흡수 CO2의 신축 진동을 나타냅니다. 공중 또는 CO2 NP 곡물 내부. 대기 CO2의 빠른 흡수 재료의 더 큰 표면적을 나타냅니다[18]. 1629 cm −1 에서 광범위한 흡수 1392 및 1064 cm −1 에서 C=C 방향족 고리 스트레칭 및 날카로운 피크에 해당 C-N 지방족 아민의 신축 진동에 해당합니다[48]. 978 cm −1 의 강렬한 피크 NiO [44]의 금속 산소 스트레칭 주파수를 확인했습니다.
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NiO에 대한 생강 추출물이 포함된 FTIR 스펙트럼(a ) 및 마늘(b )
2535–2313, 1828–1629 및 1585–1392 cm −1 로 NiO의 생물학적 환원 후 관찰된 피크 이동 식물화학물질, 테르페노이드, 플라보노이드, 폴리올 및 생물 환원에서 킬레이트화 및 캡핑을 담당하는 케톤, 알코올, 카르복실산 및 아민 작용기를 갖는 단백질을 나타냅니다.
식물 화학적으로 환원된 NiO-NPs의 표면 형태와 크기는 그림 6a-f에 제시된 것처럼 전계 방출 주사 및 투과 전자 현미경을 사용하여 결정되었습니다. NiO-NPs는 입방체와 약간의 응집을 갖는 구형(<50 nm)으로 다형성을 보였다[40]. NP의 응집은 입자 사이의 폴리머 접착 및 자기 상호 작용에서 분명할 수 있습니다[49].
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아 –f 생강에 의해 식물화학적으로 환원된 NiO의 SEM 이미지(a ) 및 마늘(b ). 생강과 식물화학적으로 환원된 NiO의 TEM 이미지(c ) 및 마늘(d ) 및 생강에 의해 식물화학적으로 환원된 NiO의 크기 분포(e ) 및 마늘(f )
합성된 NiO-NPs의 원소 분석 및 추가 특징은 에너지 분산 X선 분광법(EDS)에 의해 설명되어 그림 7a, b와 같이 순수한 NiO 상을 확인했습니다. EDS 스펙트럼은 1에서 10 kV 사이의 테스트된 샘플에 존재하는 Ni의 고순도와 직접적으로 관련된 3개의 피크를 확인했습니다. 스펙트럼을 통해 관찰된 Ni, O, C 및 Zn의 원자량 백분율은 각각 54.69, 27.81, 18.06 및 -0.55입니다.
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아 , b 녹색 합성 NiO-NPs의 EDS 스펙트럼
XPS에 C1이(가) 표시됩니다. , O1s 및 Ni2p 합성 샘플의 화학적 성질과 결합 상태를 암시하는 그림 8a-d의 식물 화학적으로 환원된 NiO-NPs의 스펙트럼. 284.8 및 286.2 eV에서 가장 강렬한 피크는 C1s를 나타냅니다. 스펙트럼(그림 8b)은 C–C 및 C–OH/C–O–C [21]에 해당합니다. O1s 530.8 eV에서의 피크(그림 8c)는 산소 원자의 히드록실기, 니켈 공석에 인접한 산소 원자 또는 산소 결합 탄소 원자 C=O에 할당될 수 있습니다[1, 15, 37]. 532.2 eV에 위치한 기여는 흡수된 물 분자(NiOH)의 산소 원자에 기인합니다[31, 41]. Ni2p Ni2p를 포함하는 스펙트럼 3/2 및 Ni2p 1/2 피크는 가우스-로렌츠 함수를 사용하여 5가지 구성요소로 분리할 수 있습니다(그림 8d). 872.72 및 855.82 eV에서 가장 집중적인 피크는 Ni2p에 속합니다. 1/2 및 Ni2p 3/2에 해당하는 위성 피크가 각각 879.36 및 861.57 eV입니다[16]. Ni(2p 1/2) 및 Ni(2p 3/2) 및 NiO-NP 코어 수준은 17.28 eV로 이전 보고서와 잘 일치합니다[33, 34].
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아 –d 식물화학적으로 환원된 입자에 대한 XPS 조사(a ), C1s 궤도(b ), O1s NiO의 스펙트럼(c ), Ni2p (d )
생강 및 마늘 뿌리 추출물과 녹색/식물화학적으로 환원된 NiO-NPs의 항균/살균 작용은 그림 9a-d 및 표 1과 같이 억제 영역 측정(mm)을 통한 한천 웰 확산 분석을 사용하여 평가되었습니다. 결과는 강한 관계를 나타냅니다. NP 농도와 억제 영역(mm) 사이. 상당한 억제 영역(mm)(P <0.05)는 샘플 1(1.2 ml:1), 2(1.8 ml:1), 3(2.4 ml:1), 4(3 ml:1), 5(3.6 ml:1) 및 6( 4.2 ml:1) 범위(3–4.9 mm) 및 (3.05–5.2 mm) 저농도 및 고농도에서 생강에 의해 식물화학적으로 NiO-NPs를 감소시켰고(그림 9c, d), (3.15–5.3 mm) 및 (3.75– 5.9 mm) MDR S에 대해 마늘과 함께 식물화학적으로 감소된 NP. 구균 (그림 9e, f). 생강 뿌리 수성 추출물은 제로 효능을 나타내었고(그림 9a), 마늘 뿌리는 저농도 및 고농도에서 각각 2.65 및 5 mm 억제 영역을 나타냈습니다(그림 9b). 모든 결과는 음성 대조군 DIW(0 mm) 및 양성 대조군 시프로플록사신(12.55 mm)과 비교되었습니다. 전반적으로 마늘과 함께 식물화학적으로 환원된 NiO-NPs는 유의미한 것으로 나타났습니다(P <0.05) MDR S에 대한 향상된 살균 작용. 아우레우스.
<그림>
아 –f 생강 수성 추출물(a ), 마늘(b ), 그리고 생강 추출물에 의해 저용량 및 고용량에서 식물화학적으로 합성된 NiO-NPs(c , d ) 및 마늘( , f )
산화 스트레스 내성의 차이는 항균 활동 전위에서 추론적인 역할을 하는 합성 나노물질의 표면적, 형태 및 입자 크기와 같은 다양한 요인에 따라 다릅니다[29, 36]. 박테리아 균주와 나노 크기의 물질 사이의 정전기적 상호 작용은 박테리아 세포 사멸에 책임이 있는 것으로 밝혀진 활성 산소 종의 생성을 초래합니다[2,3,4,5, 22]. 양이온 Ni 2+ 의 강한 상호작용을 포함하여 박테리아 균주와의 나노물질 반응에 대해 가능한 두 가지 반응이 발견됨 박테리아 세포의 음으로 하전된 부분은 붕괴를 초래하는 반면, 두 번째 반응은 NiO 표면에 빛을 조사하면 원자가에서 전도대로 전자 여기됩니다. O2와의 추가 전자 반응 O − 생성 2 H2를 초래하는 라디칼 O2 생산. ·h + 반응 시 ·OH 생성 발생 물과 함께. 따라서 결과 O - 2 · 및 ·OH 종은 박테리아 세포 외부 표면에 존재하는 지질 또는 단백질 분자를 분해하는 데 중요한 역할을 합니다[39].
그림 10 a-e는 실온에서 뿌리 추출물과 녹색/식물화학적으로 환원된 NiO-NPs의 존재하에서 MB 촉매 환원을 보여줍니다. 그림 10a는 기존의 방법으로 합성된 NiO-NPs의 촉매 잠재력을 보여주고 (그림 10b, c) 생강과 마늘 뿌리 수성 추출물의 촉매 잠재력을 나타냅니다. 식물화학적으로 환원된 NiO-NPs의 촉매 용량은 그림 10d에 나와 있습니다. e. NiO와 식물 뿌리 추출물은 메틸렌 블루 환원에 15, 21 및 38분을 소비했기 때문에 효율적인 나노 촉매가 아님이 분명합니다(그림 10a-c). 생강과 함께 식물화학적으로 감소된 NP는 빠른 분해를 보였습니다(λ 최대 =8 min) MB가 류코메틸렌 블루로 효율적으로 전환됨(그림 10d). 마늘 매개 NiO-NPs는 5분 만에 100% 염료 감소의 유사한 패턴을 보여주었습니다(그림 10e).
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아 –이 NiO의 촉매 활성(a ), 생강 추출물(b ), 마늘 추출물(c ), 생강에 의해 식물화학적으로 환원된 NiO(d ), 마늘은 NP를 감소시켰습니다(e )
녹색/식물화학적으로 환원된 NP는 기증자 종(BH4)에서 전자를 전달하여 상당한 촉매 염료 분해를 수행합니다. )를 수용체(MB)에 전달하고 활성화 에너지를 줄여 시스템을 안정화합니다[27]. 데이터는 기존의 NP 및 개별 추출물과 비교하여 효율적인 나노 촉매로서 녹색 NP를 나타냅니다.
생강과 마늘 뿌리 추출물을 함유한 NiO-NPs는 촉매제뿐만 아니라 우수한 살균제 역할을 했습니다. 식물화학적 그룹을 갖는 뿌리 추출물의 혼입은 FTIR에 의해 밝혀진 성공적인 NiO-NP 합성을 초래했습니다. XRD 피크는 NiO 6각형 및 면심 입방체(fcc) 격자를 확인했고 SEM은 평균 크기가 16-52(생강 도핑) 및 11-59 nm(마늘 도핑)인 NP의 입방체 및 구형 형태로 다형성을 확인했습니다. 그러나 원소 분석은 EDS와 XPS로 분석한 화학적 성질과 결합 상태를 보여주고 니켈과 산소의 실제 비율을 제시한 반면, UV 분석은 350 nm 범위에서 흡수 피크 차이를 확인하고 더 많은 양의 도펀트에서 블루 쉬프트를 도입했습니다. 식물화학적으로 마늘은 고농도에서 NiO를 환원시키면 생강이 환원된 NP에 비해 MDR S에 대해 더 강력한 것으로 밝혀졌습니다. 구균 효율적으로 MB를 줄일 수 있습니다. 따라서 마늘 뿌리 추출물의 녹색/식물화학적으로 환원된 NiO는 첨단 의학에서 항생제 내성을 대체하고 섬유 산업에서 환경 위험이 없는 촉매제로 채택될 수 있습니다.
모든 데이터는 제한 없이 완전히 사용할 수 있습니다.
에너지 분산 X선 분광기
면심입방체
푸리에 변환 적외선 분광기
그람 양성
그람 음성
분말 회절 표준 공동 위원회
메틸렌 블루
니켈
산화니켈
나노미터
나노입자
주사전자현미경
투과전자현미경
자외선 가시 분광법
X선 광전자 분광법
X선 회절
나노물질
초록 산화아연 나노입자(ZnO NPs)는 산업, 상업 제품 및 의약 분야를 포함한 광범위한 응용 분야에서 사용됩니다. ZnO NP의 독성에 대한 수많은 기계론적 연구가 깨끗한(신선한) NP에 대해 수행되었습니다. 그러나 변형된(노화) ZnO 나노입자에 의해 유도된 세포독성과 기본 메커니즘은 아직 명확하지 않습니다. 여기에서 우리는 시간이 지남에 따라 ZnO NP의 물리화학적 변형을 관찰한 후 신선하고 오래된 NP의 세포 독성을 평가했습니다. 우리는 신선한 ZnO 나노입자가 노화된 나노입자보다 더 높은 세포자멸사 수준을 유도한다는
초록 나노기술은 과학의 모든 분야에서 중요한 응용으로 가장 유망한 연구 분야가 되었습니다. 최근 몇 년 동안, 산화주석은 나노미터 범위에서 이 물질의 합성으로 개선된 매혹적인 특성으로 인해 엄청난 주목을 받았습니다. 오늘날 주석 산화물 나노 입자를 생산하기 위해 수많은 물리적 및 화학적 방법이 사용됩니다. 그러나 이러한 방법은 고가이고 높은 에너지를 필요로 하며 합성 과정에서 다양한 유독성 화학물질을 사용한다. 인간의 건강 및 환경적 영향과 관련된 증가된 우려는 생산을 위한 비용 효율적이고 환경 친화적인 공정의 개발로 이어졌습니다
