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종양 광검출 및 치료를 위한 5-아미노레불린산-스쿠알렌 나노어셈블리:체외 연구

초록

5-아미노레불린산(5-ALA) 투여에서 유래한 천연 감광제인 프로토포르피린 IX(PpIX)는 여러 암의 광진단 및 광역학 요법에 임상적 용도를 발견했습니다. 그러나 종양학에서 5-ALA의 광범위한 사용은 생물학적 장벽을 통과하고 종양 조직에 도달하는 능력을 감소시키는 전하 및 극성으로 인해 방해를 받습니다. 5-ALA의 생체 분포를 개선하려면 고급 약물 전달 플랫폼이 필요합니다. 여기에서 우리는 5-ALA 전달을 위한 새로운 접근 방식을 보고합니다. 스쿠알레노일화 전략은 5-ALA를 콜레스테롤의 천연 전구체인 스쿠알렌에 공유 결합하는 데 사용되었습니다. 5-ALA-SQ 나노어셈블리는 수중에서의 자가 조립에 의해 형성되었다. 나노어셈블리는 70nm의 평균 크기, 0.12의 다분산 지수, + 36 mV의 ζ 전위를 갖는 단분산이었습니다. 그들은 몇 주 동안 좋은 안정성을 보여주었습니다. 5-ALA의 약물 로딩은 26%로 매우 높았다. 인간 전립선암 세포 PC3 및 인간 교모세포종 세포 U87MG에서, PpIX 생산은 나노어셈블리와 함께 배양 시 시험관 내에서 모니터링되었습니다. 짧고 긴 배양 시간에서 1.0~3.3mM의 5-ALA-Hex와 비교하여 암세포에서 PpIX 유도 형광을 생성하는 데 더 효율적이었습니다. 5-ALA와 비교하여 4시간에 우수한 형광 성능을 보였지만 24시간에 감소했습니다. 5-ALA-SQ는 5-ALA의 전신 투여에 대한 큰 잠재력을 가진 새로운 나노 전달 플랫폼을 제시합니다.

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배경

의료 나노기술은 유망한 신약 전달 플랫폼을 도입했습니다. 이들은 약리학적 활성 화합물의 화학적 안정성 및 약동학적 프로파일을 개선하는 동시에 작용 부위에서 제어된 전달을 제공하는 데 도움이 되는 생체적합성 및 생분해성 나노물질로 구성됩니다[1,2,3]. 그러나 지금까지 시장에 도달한 나노입자 시스템은 극소수에 불과합니다. 기존 나노입자(NP)의 주요 함정은 주로 열악한 약물 로딩(보통 5% 미만)과 표적 부위에 도달하기 전에 약물의 상당 부분이 조기에 방출되는 "버스트 방출 효과"입니다. 이는 부작용을 유발하고 독성 및 약리 활성 손실을 유발할 수 있습니다[4].

스쿠알렌(SQ)은 화학식 C30의 선형 트리테르펜입니다. H50 및 콜레스테롤 및 기타 스테로이드의 전구체 [5]. 스쿠알렌은 인체에서 간과 피부에서 합성되고 혈액에서 저밀도지단백(LDL)과 초저밀도지단백(VLDL)에 의해 운반된다[6]. 종양 요법의 맥락에서 스쿠알렌은 특정 화학요법제에 대해 강력한 강화 효과를 나타냈습니다[7]. 자연계에서 널리 발견되고 안전하기 때문에 스쿠알렌은 백신, 다양한 활성 화합물 및 유전자 전달을 위한 지질 에멀젼 제조의 부형제로서 제약 기술에서 응용되고 있습니다[6, 8, 9]. 스쿠알렌은 다른 약물에 대한 공유 결합에 적합한 것으로 밝혀졌습니다. 이러한 방식으로 생성된 고급 나노시스템은 젬시타빈[10,11,12], 파클리탁셀[13], 시스플라틴[14] 또는 독소루비신[15]과 같은 화학요법제에 접합된 스쿠알렌을 통합합니다. 이 접근법을 "스쿠알레노일화"라고 하며 활성 성분이 공유 결합된 나노 콜로이드 시스템의 형성과 함께 전구약물 전략을 포함합니다[16, 17]. 스쿠알렌 기반 나노어셈블리(NAs)는 수성 매질에서 기능적 구성요소의 자가 조립에 의해 형성되며 고유한 높은 약물 로딩을 특징으로 합니다[18]. 스쿠알레노일화는 약물 안정성을 향상시키고 난용성 약물의 용해도를 증가시켜 생체 이용률을 개선하고 전신 순환에서 약물 반감기를 연장시키는 것으로 밝혀졌습니다[14, 16]. 대부분의 경우, 이러한 자가조립된 NA는 모약물보다 더 나은 약리 활성을 나타낸다[16, 19]. 또한, 스쿠알레노일화는 치료 및 영상화 양식을 모두 포함하는 NA를 구성하는 수단을 제공합니다[20]. Couvreur와 동료들은 MRI 에이전트를 스쿠알레노일-젬시타빈(SQgem) 나노 어셈블리에 통합하여 유사한 검사학적 NA를 보고했습니다[14]. 이러한 유형의 다기능 시스템은 맞춤형 의료를 위한 새로운 치료학적 제제를 개발하는 데 매우 중요할 수 있습니다.

암 진단학의 맥락에서 소분자 5-아미노레불린산(5-ALA)의 투여(그림 1)는 광역학 요법(PDT)을 위한 5-ALA의 임상적 사용으로 이어졌습니다[21,22,23] , 광진단(PD)[24], 뇌암 신경교종 환자의 형광 유도 종양 절제[25,26,27]. 검사는 헴 주기의 우회된 피드백 억제의 결과로 암 조직 내에서 5-ALA의 대사 및 프로토포르피린 IX(PpIX)의 선택적 축적에 의해 달성됩니다. 그러나, 5-ALA PD 및 PDT의 효능은 혈류에서 발견되는 중성 pH에서 양성 이온 성질에 의해 심각하게 방해를 받습니다. 5-ALA의 안정성과 약동학 프로파일을 개선하기 위해 다양한 시도가 있었습니다. 5-ALA의 아미노 말단과 카르복실산 말단은 모두 다양한 접근법에 의해 변형되었습니다[28]. 5-ALA의 카르복실기의 에스테르화는 5-ALA 메틸 에스테르(Metvix®)[29]로 이어지며 광선각화증, 기저 세포 암종 및 급성 여드름의 국소 치료에 사용됩니다. 5-ALA의 헥실 에스테르(5-ALA-Hex)(Hexvix®)는 방광암의 광진단(PD)에 대한 시판 허가를 얻었으며[30, 31], 자궁경부암 및 중증 여드름 치료를 위해 실험적으로 이용되었습니다[32 ,33,34].

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NA 빌딩 블록 요소의 화학 구조. 5-ALA(a ), 5-ALA-16진수(b ), 스쿠알렌(c ) 및 5-ALA-SQ(d )

그러나 Gliolan™을 제외하고 5-ALA 및 그 유도체의 임상 사용은 대부분 국소 투여로 제한됩니다. 이것은 유방암, 결장직장암, 폐암 및 전립선암과 같은 더 중요한 유형의 암에서의 사용을 제한합니다. 5-ALA의 사용을 확대하려는 시도는 최근 매우 유망한 활성을 보인 5-ALA의 아미노 말단 변형 포스파타제 민감성 유도체를 가지고 있습니다[35, 36]. 또한 5-ALA를 고분자 NA[37,38,39] 또는 리포솜[40,41,42,43]과 덴드리머[44, 45] 또는 금 NP[46 , 47]. 이러한 솔루션 중 일부가 5-ALA 안정성과 약동학 프로필을 개선하는 데 도움이 되었지만, 앞서 언급한 시도 중 어느 것도 암 나노의학 분야에서 성공적인 임상 후보로 이어지지 않았습니다.

이 작업의 목적은 수성 매질에서 자가 조립되고 전제 조건인 5-ALA의 높은 약물 부하를 포함하는 5-ALA-스쿠알렌(5-ALA-SQ) 접합체 빌딩 블록(그림 1d)의 설계 및 합성이었습니다. 암의 약리학적 활성을 위해. NA는 형광 PD 기능에 대해 두 가지 다른 암 세포주에서 테스트되었습니다. 간접적인 암 표적화를 달성하기 위해 혈장 지단백질을 활용하는 스쿠알렌 기반 NA[48]에 대한 최근 보고와 결합하여, 이 5-ALA 나노기술 접근법은 이 연구에서 사용된 전립선암과 같은 다양한 암의 PD 및 PDT에 5-ALA의 사용을 확장합니다. .

결과 및 토론

5-ALA-SQ 빌딩 블록 합성

효율적인 수렴 화학 전략을 사용하여 스쿠알렌과 5-ALA에서 5-ALA-SQ 빌딩 블록을 합성했습니다(그림 2). 5-ALA는 먼저 N으로 아미노 말단에서 보호되었습니다. - 표준 조건을 사용하는 Boc 보호 그룹. 나노 어셈블리 유도 스쿠알렌 알코올(3 )은 문헌[49]에 설명된 절차에 따라 4가지 합성 단계로 스쿠알렌으로부터 합성되었습니다. Boc-5-ALA(2 ) 및 스쿠알렌 알코올(3 )을 EDC 및 DMAP의 존재하에 결합하여 보호된 에스테르 유도체(4 ) 좋은 수익률. 최종 Boc 탈보호는 스쿠알렌 스캐폴드에 친전자성 첨가를 피하기 위해 약한 산성 조건에서 수행되어야 했습니다. 최종 생성물을 역상 HPLC로 정제하여 NA 빌딩 블록을 우수한 수율로 산출했습니다.

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5-ALA-SQ 빌딩 블록 합성. 5-ALA-SQ는 5-ALA 및 SQ의 수렴 합성을 사용하여 4가지 합성 단계로 합성되었습니다.

5-ALA-SQ 나노어셈블리

나노입자(NPs)에 의한 활성 화합물의 작용 부위로의 효율적인 전달을 달성하기 위해 나노입자 크기, 모양 및 표면 전하와 같은 매개변수가 중요한 역할을 하고 체내 나노 전달 시스템의 약동학을 제어합니다. 50]. 특히 입자 크기는 전신 순환에서 NP 반감기, 대식세포에 의한 격리, 누출된 혈관계를 통해 작용 부위로의 유출과 같은 여러 약동학적 현상을 지배합니다[51]. 나노 입자의 모양과 크기는 혈관 구조에서 발견되는 구멍을 통해 혈관 밖으로 유출되는 능력을 조절합니다[50, 51]. 크기와 모양은 활성 표적화 및 세포 흡수에 매우 중요합니다. 작은 NP와 구형 모양은 표면적이 더 작기 때문에 더 큰 비구형 나노미립자 시스템에 비해 접촉점이 훨씬 제한적이기 때문입니다[51].

5-ALA-SQ 빌딩 블록의 자가 조립은 수성 매질에서 자발적으로 발생했습니다. NA는 나노 침전에 의해 형성되었습니다. 5-ALA-SQ 접합체를 유기 용매에 용해시키고 물에 적가하였다. 유기 용매를 완전히 증발시켜 NA의 수용액을 얻었다. 5-ALA-SQ NA는 0.12의 낮은 다분산 지수를 갖는 단분산이었다. 전기영동 이동도 측정은 36mV의 ζ 전위를 제공했으며 동적 광산란(DLS)은 평균 크기가 70nm인 NA의 단분산 분포를 나타냈습니다(그림 3). NA 크기 범위는 혈류에서 장기간 순환을 위한 좋은 잠재력을 제공합니다[50]. 그럼에도 불구하고 5-ALA-SQ NA는 이전에 보고된 SQ 합성물보다 훨씬 작으며, 이는 100~300nm 범위에서 다른 초분자 배열을 나타냅니다[19].

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5-ALA-SQ NA의 특성화. 낮음(a ) 및 높음(b ) 확대 cryo-TEM 이미지, DLS 분석(c ) 및 4°C에서 안정성(d) )

더 작은 크기는 SQ 모이어티와 비교하여 양전하를 띤 아미노기 및 상대적으로 작은 5-ALA 분자 때문일 수 있습니다. 스쿠알렌에 부착된 작은 분자의 변이가 자가 조립 및 화합물-스쿠알렌 접합체 패킹의 변화를 유발하여 결과적으로 NA의 모양과 크기를 변경한다는 것이 입증되었습니다[16]. 5-ALA의 고도로 양전하를 띠는 아미노 그룹은 자체적으로 대량의 물을 향하는 반면 친유성 사슬은 이러한 NA의 내부를 차지할 수 있습니다. 그러나 정확한 초분자 구조는 아직 밝혀지지 않았습니다. 다른 스쿠알렌 나노복합체에 비해 현저히 작은 크기에도 불구하고 NA는 크기와 PDI가 몇 주 동안 일정하게 유지되어 우수한 저장 안정성을 나타냅니다.

새로운 5-ALA-SQ NA의 또 다른 중요한 측면은 로딩이 훨씬 덜 효율적인 다른 보고된 5-ALA 나노미립자 시스템과 비교하여 높은 26%의 약물 로딩을 달성한다는 것입니다[37, 38, 41]. 약물 로딩이 불량한 약물 로딩 NP에서 투여 용량이 표적 조직의 약리학적 활성 농도에 도달하기에 충분하지 않을 수 있기 때문에 약물 로딩은 NP 전달에서 매우 중요하다[4]. 로딩은 5-ALA가 1:1 몰비로 스쿠알렌 스캐폴드에 공유 결합되어 있기 때문에 5-ALA 및 5-ALA-SQ의 분자량을 고려한 간단한 계산으로 결정할 수 있습니다.

암 세포의 PpIX 형광 동역학 측정

PpIX의 시간 의존적 형성은 PC3 인간 전립선암 세포 및 5-ALA-SQ NA 및 5-ALA-Hex와 함께 배양된 U87MG 교모세포종에서 평가되었습니다. 그림 4는 24시간 동안 증가하는 농도의 5-ALA-SQ NA 또는 5-ALA-Hex에 노출된 PC3 인간 전립선암 세포에서 PpIX 형성을 보여줍니다.

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PC3 세포에서 PpIX 축적의 운동 형광 측정. 세포를 증가하는 농도의 5-ALA-SQ NA(a ) 또는 5-ALA-16진수(b) )

농도 의존적 ​​PpIX 형광 프로파일은 5-ALA-SQ NA에 대해 관찰되었습니다. 1.0 및 2.0mM에서 PpIX 형광은 24시간 동안 꾸준히 증가했지만 낮은 농도에서 8시간 배양 후 안정기에 도달했습니다. 반면에 5-ALA-Hex는 이전에 보고된 바와 같이 0.10~0.30mM의 낮은 농도 범위에서 PpIX의 가장 높은 축적을 유도했습니다[35, 52]. 그러나 1mM 이상의 농도에서 5-ALA-Hex는 관찰된 전체 형광을 감소시키고 사용을 방해하는 세포에 독성이 있는 것으로 밝혀졌습니다[36].

다음으로, PC3 및 U87MG 인간 교모세포종 암 세포에서의 용량 의존적 PpIX 축적은 최적의 NA 투여량을 추정하기 위한 목표로 수행되었습니다. 5-ALA-SQ NA 및 5-ALA-Hex를 사용한 배양 4시간 및 24시간에서의 형광 강도는 그림 5에 나와 있습니다. 매우 중요한 것은 5-ALA-SQ NA가 두 세포주에서 PpIX 생산을 유도했다는 것입니다. 또한, 최대 형광 수준은 두 세포주에서 ALA-Hex 대조군과 비슷합니다. 또한 PC3 세포에서 1.0 및 2.0mM 농도의 5-ALA-SQ NA가 PpIX의 가장 높은 축적을 유도하는 데 최적이라는 점도 알 수 있습니다. U87MG 세포에서는 짧은 배양 시간 동안 5-ALA-SQ NA의 농도에 따라 유의한 차이가 없었습니다(그림 5c). 24시간에 PpIX 축적은 PC3 세포와 유사한 5-ALA-SQ NA 또는 5-ALA-Hex의 농도에 의존하는 것으로 밝혀졌습니다. ALA-Hex와 다소 유사한 PpIX 유도의 감소는 NA의 존재에 더 민감한 더 높은 농도의 5-ALA-SQ NA에서 장기간 배양 후에 발견되었습니다.

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용량-반응 곡선. PC3에서 5-ALA-SQ NA(파란색) 및 5-ALA-Hex(빨간색)가 있는 농도 의존 PpIX 축적(a , b ) 및 U87MG(c , d ) 4시간(왼쪽) 및 24시간(오른쪽) 배양 후 세포

그림 5는 24시간에 PpIX 생산 곡선이 PC3 및 U87MG 세포 모두에서 종 모양임을 보여줍니다. 1mM 농도의 5-ALA-SQ NA가 PC3 세포에서 가장 높은 PpIX 축적을 유도한 반면, U87MG 세포는 더 높은 농도를 견딜 수 있었고 PpIX 형광의 증가는 2mM 5-ALA-SQ NA까지 나타났습니다. 일반적으로 5-ALA-Hex와 비교할 때 PpIX의 생합성을 효율적으로 유도하기 위해서는 더 높은 농도의 5-ALA-SQ NA가 필요했는데, 이는 아마도 암세포 내 에스테르 결합 절단 속도가 다르기 때문일 것입니다. 5-ALA-Hex의 비특이적 독성으로 인해 1mM 이상의 5-ALA-Hex 농도가 사용되었을 때 PpIX 생성의 감소가 관찰되었습니다. 이 효과는 형광성이 있는 5-ALA-SQ에서 훨씬 덜 두드러졌습니다. 수준은 테스트된 최고 농도(3.3mM)와 배양 시간 연장에서만 떨어지기 시작했습니다(그림 5b, d). 그러나 형광 수준은 NA에서 관찰된 형광 지연 없이 두 화합물에서 유사했습니다.

NA는 또한 외과적 절제 동안 교모세포종의 PD용으로 판매되는 5-ALA 대조군에 대해 U87MG 교모세포종에서 분석되었습니다. 그림 6은 4시간 및 24시간 후 U87MG 세포의 형광을 나타냅니다. 5-ALA-SQ NA는 임상 환경에서 매우 관련성이 높은 5-ALA와 비교하여 4시간 후 훨씬 더 높은 형광을 유도했습니다. 24시간에 형광 프로파일은 5-ALA의 느리고 적극적인 흡수가 세포 내에서 충분한 5-ALA 양을 제공하기 때문에 더 낮은 농도에서 5-ALA에 유리하게 이동합니다. NA는 최적의 1.0 및 2.0mM 농도의 NA에서 5-ALA와 여전히 유사한 형광 수준을 보여줍니다(그림 6b).

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용량-반응 곡선. 4시간 후 U87MG 세포에서 농도 의존적 ​​PpIX 축적(a ) 및 24시간(b ) 5-ALA-SQ NA(파란색) 및 5-ALA(녹색)를 사용한 배양

임상 실습에서 5-ALA는 국소 또는 경구 투여되지만 전하를 띤 특성으로 인해 초기 용량의 작은 부분만이 세포 유형에 따라 PEPT1, PEPT2 또는 BETA 수송체와 같은 내인성 펩타이드 수송체를 통해 표적 세포로 들어갑니다. [40, 53]. SQgem 유도체의 NA에 대한 최근 연구에 따르면 세포 진입은 단일 분자 빌딩 블록의 알부민 강화 확산에 의해 좌우되며 세포 외 단백질의 존재에 크게 의존하는 것으로 밝혀졌습니다[54, 55]. 또한, 우리가 최근에 보고한 원적외선 형광성 NA도 빠른 내재화를 시연했으며, 5-ALA-SQ 형광 동역학 실험과 용량-반응 곡선은 단일 분자 빌딩 블록 내재화 및 형광 PpIX를 산출하기 위한 효율적인 후속 대사를 확증합니다.

결론

이 시험관 내 개념 증명 연구에서 수렴 화학 전략을 사용하여 스쿠알렌과 5-ALA에서 5-ALA-SQ 빌딩 블록을 합성했습니다. 5-ALA-SQ NA는 물에서 자발적인 나노침전에 의해 제조되었습니다. NA는 크기 평균 70nm, 다분산 지수 0.12, 양의 ζ 전위 36mV, 높은 26% 5-ALA 로딩으로 단분산 및 안정했습니다. PpIX 생산은 시간 경과에 따른 형광 증가를 측정하고 5-ALA 및 5-ALA-Hex와 비교하여 2개의 암 세포주에서 시험관 내에서 평가되었습니다. 결과는 SQ-ALA NA가 PC3 및 U87MG 암 세포 유형에서 PpIX 생성을 유도하는 데 매우 효율적임을 보여주었습니다. 그들은 시험관 내에서 4시간 및 24시간 배양 시간에 더 높은 농도에서 형광 유도에서 5-ALA-Hex를 능가합니다. 그러나 5-ALA와 비교하여 더 짧은 배양 시간에서 우수한 형광 유도를 보여줍니다. 이러한 발견의 범위에서 우리는 5-ALA-SQ NA가 5-ALA의 약동학적 단점을 극복하기 위한 매력적인 나노기술 솔루션을 제시한다는 결론을 내릴 수 있습니다. 또한, 생체 내 실험은 종양의 형광 PD 및 PDT 치료를 위한 5-ALA의 전신 전달 가능성을 평가할 것입니다.

방법/실험

시약은 상업적 공급업체인 Sigma-Aldrich(Bucks, Switzerland) 및 Acros Organics(Basel, Switzerland)에서 구입하여 추가 정제 없이 사용했습니다. 중수소화 NMR 용매는 Cambridge Isotope Laboratories(Tewksbury, USA)에서 입수했습니다. 테트라히드로푸란(THF) 및 디클로로메탄(CH2 Cl2 ) 무수 엔지니어링 알루미나 컬럼 기반 건조 시스템에서 얻었다. 사용된 다른 모든 용매는 HPLC 등급이었습니다. N,N-디메틸포름아미드(DMF), 메탄올(CH3 OH), 디에틸 에테르(Et2 O) 및 아세톤은 Sigma-Aldrich(Buchs, Switzerland)에서 구입했습니다. 에틸 아세테이트(AcOEt)는 Biosolve(Dieuze, France)에서 구입했습니다. 아세토니트릴(CH3 CN)는 Carlo Erba Reagents(Balerna, Switzerland)에서 공급했습니다. n-헥산의 ≥ 95% 헥산은 Fisher Chemical(Basel, Switzerland)에서 구입했습니다. 제조에 사용된 물은 Milli-Q lab water system(Millipore, Molsheim, France)에 의해 탈이온화되었습니다. 무수 조건을 보장하기 위해 아르곤 양압의 표준 주사기 격막을 사용하여 화학 반응을 수행했습니다.

얇은 층 크로마토그래피(TLC)는 적절한 이동상이 있는 알루미늄 지지 실리카 플레이트(Merck-Keiselgel 60 F254)로 수행하고 UV 형광 램프(254 및 366nm)를 사용하여 시각화하고/하거나 닌히드린, 20% 황산으로 현상했습니다. 산, 또는 인몰리브덴산(PMA). 플래시 크로마토그래피는 PDA 검출기(200-800nm) 및 자동 분획 수집기가 장착된 Interchim 실리카 컬럼 puriFlash® HP 30μm를 사용하여 Interchim(프랑스 Montlucon)의 자동화된 PuriFlash® 4100 기계에서 수행되었습니다. Flash Interchim 소프트웨어 버전 5.0x를 사용하여 용리 프로파일을 모니터링했습니다. Semi-preparative HPLC 컬럼은 Waters Symmetry 300TM - 5μm(19 × 150mm), C8 컬럼(Baden-Dättwil, Switzerland)에서 수행되었습니다. 분석 UPLC는 Waters PDA 검출기(Baden-Dättwil, Switzerland)가 장착된 물 시스템에 장착된 Macherey-Nagel EC50/2 Nucleodur Gravity 1.8μm 컬럼(50 × 2.1mm)을 사용하여 수행되었습니다. 버퍼 A =CH3 CN + 0.1% 포름산) 및 완충액 B =H2 O + 0.1% 포름산. 유속 =25°C에서 400.0μL/분 1 H 및 13 C NMR 스펙트럼은 298K에서 Varian Gemini 300MHz, Varian Innova 500MHz 또는 Bruker Avance III Cryo 600MHz 분광계에서 기록되었습니다. 화학적 이동(δ)은 백만분율(ppm)로 표시되고 커플링 상수(J)는 헤르츠(Hz). s는 단일선, d는 이중선, dd는 이중선, t는 삼중선, q는 사중선, m은 다중선입니다. 잔류 용매 피크는 proton 및 탄소 화학적 이동에 대한 내부 기준으로 사용되었습니다. NMR 스펙트럼은 Mnova 버전 10.0.2 소프트웨어 패키지로 처리되었습니다. 저해상도 질량 분석기(LRMS)는 HTS PAL-LC10A – ESI(포지티브 모드)의 API 150Ex 기기에서 수행되었습니다. 고해상도 질량 분석기(HRMS)는 ESI(양성 모드)의 QSTAR Pulsar(AB/MDS Sciex) 기기에서 수행되었습니다. ChemBioDraw Ultra 버전 14.0.0.117 소프트웨어 패키지를 사용하여 IUPAC 명명법에 따라 화학 구조를 그리고 명명했습니다. pH는 Metrohm 버퍼로 보정된 선봉 전극(Zofingue, Switzerland)을 사용하여 Metrohm 691 pH 미터에서 측정되었습니다. 통계 분석은 GraphPad Prism 6, 2016, (GraphPad Software) 소프트웨어를 사용하여 수행되었습니다. 값 <0.05는 통계적으로 유의한 것으로 간주되었습니다.

SQ-ALA 빌딩 블록의 합성

5-(tert-부톡시카르보닐아미노)-4-옥소펜타노산(2)

Boc-5-ALA는 공개된 절차에 따라 합성되었습니다. 분광 데이터는 문헌[56]과 동일합니다. 1 H NMR(600MHz, DMSO-d6) δ 12.12(s, 1H), 7.06(t, J =5.9 Hz, 1H), 3.76(d, J =5.9 Hz, 2H), 2.61(t, J ) , 2H), 2.40(t, J =6.5 Hz, 2H), 1.38(s, 9H). 13 C NMR(151MHz, DMSO) δ 206.62, 174.07, 156.21, 78.54, 49.97, 40.38, 40.24, 40.11, 39.97, 39.83, 39.425, 6, 39.425, [M+H] + 232.1, 발견 232.7.

(4E,8E,12E,16E)-4,8,13,17,21-펜타메틸도코사-4,8 ,12,16,20-펜타엔-1-올(3)

스쿠알렌 알코올 3 보고된 절차에 따라 스쿠알렌으로부터 23.7% 수율로 무색 오일로 합성되었습니다[49]. 1 H NMR(300MHz, CDCl3 ) δ 5.17-5.06(m, 5H, CH), 3.62(q, J =6.3Hz, 2H, CH2 -OH), 2.17 – 1.92(m, 18H, CH2 ), 1.67(초, 3H, CH3 ), 1.59(m, 17 H, CH3 및 CH2 ). 13 C NMR(75MHz, CDCl3 ) 135.35, 135.17, 135.14, 134.81, 131.49, 125.05, 124.64, 124.60, 124.47, 63.07, 39.98, 39.95, 39.89, 36.24, 30.92, 28.48, 26.98, 26.88, 26.78, 25.94, 17.92, 16.28, 16.23, 16.08을 Δ. LRMS(ESI):[M+NH4에 대해 계산된 m/z ] + 404.4, 발견 404.8.

(4E,8E,12E,16E)-4,8,13,17,21-펜타메틸도코사-4,8 ,12,16,20-펜타엔-1-일 5-((tert-부톡시 카르보닐)아미노)-4-옥소펜타노에이트(4)

스쿠알렌 알코올(3 )(100mg, 0.26mmol), EDC(74mg, 0.38mmol) 및 DMAP(94mg, 0.78mmol) 및 5-(tert-부톡시카르보닐아미노)-4-옥소펜타노산(2)(77mg, 0.34mmol) DCM(15mL)에 용해되었습니다. 주위 온도에서 밤새 교반한 후, 용매를 감압 하에 증발시키고 조 생성물을 DCM/에틸 아세테이트(EA) 구배를 사용하는 플래시 크로마토그래피로 정제하여 무색 오일(108mg, 0.18mmol, 70%)을 제공했습니다. 1 H NMR(300MHz, CDCl3 ) δ 5.31 – 5.20(br s, 1H), 5.13 – 5.07(m, 5H), 4.09 – 3.95(m, 4H), 2.75 – 2.53(m, 4H), 2.02 – 1.95(m, s, 3H), 1.63 – 1.50(m, 19H), 1.41(s, 9H). 13 C NMR 204.46 δ (75 MHz의, CDCl3), 172.65, 135.30, 135.16, 135.09, 133.75, 131.43, 125.34, 124.60, 124.57, 124.48, 124.45, 64.81, 50.53, 39.96, 39.93, 39.87, 35.92, 34.56, 28.52, 28.47 , 28.43, 28.24, 28.02, 26.97, 26.86, 25.92, 23.11, 17.90, 16.25, 16.21, 16.06. LRMS(ESI):[M+NH4에 대해 계산된 m/z ] + 617.5, 617.8에서 찾았습니다.

5-아미노-(((4E,8E,12E,16E)-4,8,13의 트리플루오로아세트산 염 ,17,21-펜타메틸도코사-4,8,12,16,20-펜타엔-1-일)옥시)-4-옥소펜타노에이트(5)

화합물 4 (34mg, 57mmol)을 DCM(2.0mL)에 용해했습니다. 트리플루오로아세트산(TFA)(200μL)을 첨가하고 반응 혼합물을 주위 온도에서 교반했습니다. 10분 후, 용매를 진공에서 저온에서 증발시키고 미량의 TFA를 EA(3 × 10 mL)와의 동시 증발로 제거했습니다. 조 생성물을 전체 H2를 사용하여 RP-HPLC로 정제했습니다. 무색 오일(25mg, 74%)을 생성하는 O/AcN(0.025% TFA) 구배. %). 1 H NMR(300MHz, CDCl3 ) δ 5.31 – 5.20(br s, 1H), 5.13 – 5.07(m, 5H), 4.09 – 3.95(m, 4H), 2.75 – 2.53(m, 4H), 2.02 – 1.95(m, s, 3H), 1.63 – 1.50(m, 19H). LRMS(ESI):[M+H] + 에 대해 계산된 m/z 500.4, 500.6을 찾았습니다.

나노어셈블리의 준비

NA는 다른 곳에서 자세히 설명된 나노침전에 의해 제조되었습니다[20]. 간단히 말해서 구성 요소 5 (1.2 mg, 2.0 μmol)을 50/50 V /V 혼합물 아세톤/에탄올(500μL). 그런 다음, 자기 교반 하에 100μL/min의 속도로 마이크로 주사기를 사용하여 유기상을 MilliQ 물(1.25mL)에 적가했습니다. 교반 5분 후 자석 교반 막대를 제거하고 30°C에서 회전 증발기를 사용하여 유기 용매 및 과량의 물을 제거했습니다. 나노어셈블리의 최종 농도는 2.00mM이었습니다.

5-ALA-SQ NA의 특성

5-ALA.SQ NA의 5-ALA 로딩은 다음과 같이 5-ALA 및 5-ALA-SQ 접합체의 분자량 기여도에서 계산되었습니다.

$$ \mathrm{Loading}\ \left(\%\right)=\frac{\mathrm{MW}\ \left(5-\mathrm{ALA}\right)}{\mathrm{MW}\left(5 -\mathrm{ALA}-\mathrm{SQ}\right)}\times 100 $$

NA의 유체역학적 직경은 ZetaSizer 7.01 소프트웨어를 실행하는 Malvern(Worcestershire, UK)의 NANO ZS 기기를 사용하여 동적 광산란(DLS)에 의해 측정되었습니다. 분석은 Brand(Wertheim, Germany)의 폴리스티렌(PS) 마이크로 큐벳에서 25°C, 173°의 산란 각도에서 4mW He-Ne 레이저(633nm)로 수행되었습니다. Malvern의 접힌 모세관 세포 DTS 1070에서 Malvern의 동일한 Nano ZS 기기를 사용하여 제타 전위(ZP)를 결정했습니다. 크기 분포 및 크기 평균 직경은 데이터에서 계산되었습니다. 4°C에서 보관된 NA의 안정성은 1개월 동안 정기적인 시점에서 DLS로 분석되었습니다.

TECNAI® G 2 를 사용하여 극저온 투과 전자 현미경(cryo-TEM)으로 NA의 형태를 평가했습니다. 2000 x 2000 픽셀 고해상도 디지털 카메라 TCL(Gräfelfing, Germany)이 장착된 구형 현미경(FEI, Thermo Fisher Scientific). Virtobot cryo-plunger(FEI, Thermo Fisher Scientific)를 사용하여 유리화된 얼음 샘플을 준비했습니다. NA(2.0μL, 2.0mM)를 Quantifoil Cu/Rh 200 mesh R3.5/1 그리드(SPI, West Chester, USA)에 적용하고 액체 에탄을 사용하여 유리화했습니다.

세포 배양

인간 전립선암 세포 PC3(ATTC® CRL-1435™) 및 인간 교모세포종 세포 U87MG(ATTC® HTB-14™)는 F-12K 영양 혼합물(21127-022, Thermo Fisher Scientific) 또는 최소 Essential Media(31095-029, Thermo Fisher Scientific), 각각. 세포 배지에 송아지 태아 혈청(10%, CVFSVF00-01, Eurobio), 스트렙토마이신(100μL/mL) 및 페니실린(100IU/mL, 15140-122, Thermo Fisher Scientific)을 보충했습니다. 세포는 95%의 공기와 5%의 CO2를 포함하는 가습된 대기에서 37°C에서 배양되었습니다.

체외 PpIX 형광 운동 측정

인간 전립선암 세포 PC3(12,000개 세포/웰) 및 교모세포종 세포 U87MG(10,000개 세포/웰)를 96웰 플레이트(투명 바닥 흑색 플레이트, 3603, Corning)에 접종했습니다. 다음날, 세포는 무혈청 배지에서 증가하는 농도의 5-ALA-SQ NA, 5-ALA-Hex 및 5-ALA에 노출되었습니다. PpIX 형광은 다른 시점에서 플레이트 판독기(Safire, Tecan, Switzerland)로 기록되었습니다. 여기 파장은 405nm로, 방출 파장은 630nm로 설정했습니다. 평균값 및 s.d. 플레이트당 각 시점의 각 농도에 대해 참조 값(처리 없음)과 함께 차감하고 각 세포주에 대해 플롯팅했습니다.


나노물질

  1. 향상된 약물 전달을 위한 나노섬유 및 필라멘트
  2. 암 치료를 위한 나노입자:현재 진행 상황 및 과제
  3. 종양 치료를 위한 약물 전달 시스템으로서의 환경 반응성 금속-유기 프레임워크
  4. 매우 효과적인 표적 췌장 종양 치료를 위해 혈액 순환을 연장하고 생체 적합성을 개선한 레스베라트롤이 적재된 알부민 나노입자
  5. 광열 치료 및 광음향 영상을 위한 폴리피롤 코팅 철-백금 나노입자의 합성 및 시험관 성능
  6. 생체 적합성 5-아미노레불린산/Au 나노입자 로딩 에토좀 소포체 비대 흉터의 체외 경피 시너지 광역학/광열 치료
  7. 자성 금 나노입자 표지 헤파라나제 단클론항체 및 종양 자기 공명 영상의 후속 응용
  8. 크립토코커스 네오포르만스의 진단 및 광열 치료를 위한 항체 결합 실리카 변형 금 나노막대:체외 실험
  9. 자기 공명 영상에서 종양 조기 발견을 위한 이중 인테그린 αvβ 3 및 NRP-1-표적 상자성 리포솜
  10. 아미노 말단 HBP 변형 rGO의 광열/pH 이중 반응 약물 전달 시스템 및 종양 세포에 대한 화학 광열 요법